Znr Topographie u. Histologie deri Centralnervensystems v. Helix |»omatia L. 29 



nehmen dabei einen bedeutend größeren Durchmesser an. Ebenso verkürzen sich 

 die Connective zwischen den Cerebralganglien und den unter dem Schlund ge- 

 legenen Ganglien stark, wenn man den Schlundring vom Darm abstreift. Um dies 

 zu vermeiden, habe ich versucht, die Fixierung des Nervensystems schon innerhalb 

 des Tieres zu begimien, indem ich die Konservierungsflüssigkeit in das geöffnete 

 Tier hineingoß und erst, nachdem diese einige Zeit eingewirkt hatte, das Nerven- 

 system herauspräparierte. Doch hat sich diese Älethode nicht bewährt, weil die 

 gerinnende Leibeshöhlenflüssigkeit die Einwirkung der Lösung auf die Ganglien 

 stark behinderte. 



Folgende Fixierungen kamen zur Anwendung: Das Gemisch von Flemming, 

 ZENKERSche Lösung, die Lösung von Maximow, das Gemisch von Boum (Pikrin- 

 säure, Formol, Eisessig), konz. Sublimatlösung mit und ohne Zusatz von Essig- 

 säure, MÜLLERsche Flüssigkeit, Alkohol und Formol. Als bestes Fixierungsmittel 

 erwies sich die FlemmingscIic Lösung. Es wurde die starke Lösung angewandt 

 und darin 24 — 48 Stunden fixiert. Vorzügliche Konservierungen selbst der Riesen- 

 zellen, die stets am schwierigsten zu konservieren sind, gibt konz. Sublimatlösung 

 ohne Zusatz von Eisessig. Gegenüber der FLEMMTNGschen Löstmg hat sie den 

 Vorzug, schneller und sicherer einzudringen und mannigfacliere Färbungen zu 

 erlauben. Doch sind die Resultate, die man mit Sublimat erzielt, weniger sicher 

 als die mit Flemming scher Lösung. ZEMKERsche Lösung und die Lösungen von 

 BouiN und Maxeviow fixieren die Ganglienzellen schlecht. Die Formolkonser- 

 vierung gibt ebenfalls schlechte Resultate, denn sie bewirkt starke Schrumpfungen 

 und Veränderungen des Plasmas; sie wurde daher nur für raori^hologische Studien 

 verwendet. Über die Konservierung mit Alkohol soll an andrer Stelle gesprochen 

 werden. Die HERMANNsche Lösung, die Erhard empfiehlt, wurde nicht verwendet. 



An Färbungen kamen eine Anzahl der gewöhnlichen Kern- und Plasma- 

 farbstoffe zur Verwendung: Eisenhämatoxylin, DELAHELDsches Hämatoxylin, 

 Safranin, Lichtgrün, Orange G, Eosin, Erythrosin, Säurefuchsin, das Triacid- 

 gemisch von Ehrlich und die EhrlichscIic Dreifarblösung. Als vorzüglich erwies 

 sich die Färbung mit Eisenliämatoxylin, doch wurde diese noch übertroffen durch 

 die Safranin-Lichtgrünfärbung, die am besten nach Fixierung mit FLEMMiNGScher 

 Lösung anzuwenden ist. Sehr gute Resultate gab die EhrlichscIic Dreifarb- 

 lösung nach Subhmatkonservierung; sie eignete sich besonders zur Darstellung 

 der Kemstrukturen. Für die Darstellung des Lininnetzes erwies sich die Safranin- 

 Lichtgrünfärbung als unübertrefflich. 



Die Darstellung bestimmter Zellelemente erforderte einige Spezialmethoden. 

 Die NissL-Körper wurden durch Färbung mit Toluidinblau nach Subhmatkonser- 

 vierung dargestellt. Zur Darstellung des Glykogens gebrauchte ich zwei von 

 Erhard empfohlene Fixierungsmittel mit gutem Erfolge, nämlich die Lösung 

 von V. Kemnitz (FLEMMmcsche Lösung + absoluter Alkohol: 1:1) und die 

 unter A. angeführte Lösung von Zieglwallner (1% Chromsäurelösung in 85'^ ^^ 

 Alkohol, 2% Osmiumsäurelösung, Eisessig 15 : 4 : 1). Von diesen beiden muß 

 ich der von v. Kemnitz den Vorzug geben. Was diese Methode auszeichnet, ist 

 neben einer guten Konservierung, daß sie Glykogen und Fett nebeneinander dar- 

 stellt. Die Behandlung der Objekte geschah genau nach den Angaben, die Erhahd 

 darüber gemacht hat. Das Glykogen wurde mit BESTSchem Karmin gefärbt nach 

 der von Best angegebenen Methode, als Plasmafarbe diente Lj^oner Blau. — 

 Zur Darstellung des KopscHschen Apparates bediente ich mich der von Kopsch 



