Die Zellkerne einiger Dipterenlarven und ihre Entwicklung. 121 



mit einzelnen Buckeln oder selbst fingerförmigen Anhängen besetzt, 

 andere ganz oder an einer Seite flächenhaft verbreitert und zackig 

 begrenzt, selbst fadenförmig verästelt«. In den jüngsten Kernen gibt 

 Auerbach eine dunklere Schattierung, gegen die Kermnembran hin. 

 an. Erst in Kernen von 20 (.i Durchmesser werden äußerst blasse und 

 kleine Kügelchen (»intermediäre Kügelchen«) bemerkbar, welche mit 

 dem Kern an Größe zunelnnen und besonders an seiner Peripherie 

 gehäuft sind. Später verschmelzen die Nucleolen wieder bzw. ver- 

 schwinden sie durch »Erweichung« (Larven vom sechsten und siebenten 

 Tage mit nur noch zwei Nucleolen). 



Material und Methoden. 



Zur Untersuchung gelangten die Larven folgender Dipteren: 

 Sayomyia {Corethra), Corethra (Mochlonyx), Stratiomys, Culex, Anopheles, 

 Liriope (Ptychoptera) , Erisialinus, Musca, Calliphora und Chironomus. 

 Von diesen wurden vor allem die Speicheldrüsen untersucht und zwar 

 sowohl am überlebenden, wie am konservierten Material. Die Speichel- 

 drüsen wurden aus dem Körper durch Abtrennen des Kopfes bzw. 

 bei Fehlen desselben durch Herausreißen des Schlundes präpariert. 

 So gelingt es meist, die am Kopf oder Schlund mit ihrem Ausführgang 

 befestigten Drüsen frei zu bekommen. Diese Methode gestattet dann 

 eine leichtere Handhabung des konservierten Materials, da die einzelne 

 Drüse beim Wechseln der Flüssigkeiten leichter verloren gehen kann. 



Soweit angängig, wurden die Gewebe bei Lebendiuitersuchurjg 

 in der Körperflüssigkeit belassen. War diese jedoch zu spärlich, so 

 mußte zu indifferenten Lösungen gegriffen werden; und zwar bewährten 

 sich am besten die Ringer sehe und die Ringer-Locke sehe Lösung. 

 Sterile physiologische Kochsalzlösung mit chemisch reinem Kochsalz 

 war auch noch relativ günstig, während gewöhnliche 0,7 %ige Koch- 

 salzlösung Aufquellen und Verschwinden des Kerninhaltes zur Folge 

 hatte. Es zeigt sich hier das gleiche Verhalten wie bei Wasserzusatz. 

 Deshalb ist auch Vorbedingung jeder Lebenduntersuchung wie der 

 Vorbereitung zur Konservierung vorsichtiges Abtrocknen der Larven 

 auf Fließpapier. Vielfach wurde das lebend untersuchte Gewebe noch 

 gegen verändernde Lufteinflüsse geschützt durch eine Paraffinum- 

 randung des Deckgläschens. Die Zeit zwischen Präparation und Beob- 

 achtung des überlebenden Objekts wurde möglichst eingeschränkt, 

 um nekrotische Bilder zu vermeiden. Konserviert wurde nach Ripart 

 und Petit, Gilson, Bouin, Zenker, Hermann, mit Sublimateisessig, 

 Sublimatalkohol, Methylgrünessigsäure und FLEMMiNGtcher Lösung. 



