Über die Entwicklung der Geschlechtsorgane bei Limax maximus L. 495 



Lösung wurden die Objekte in Jodalkohol gebracht, und dann das 

 gesamte Material in Alkohol von etwa 90% aufbewahrt. Die aus- 

 geschlüpften Tiere ließ ich in einer Porzellanschale sich möglichst 

 strecken und tötete sie dann durch plötzliches Übergießen mit heißer 

 ZENKER-Lösung ab, so daß ein Zusammenziehen fast gänzlich vermieden 

 wurde. Erwachsene Tiere freilich zogen sich auch bei dieser Art der 

 Konservierung noch zu stark zusammen. Sie wurden deshalb erst 

 etwa 8 — 10 Stunden in destilliertes Wasser gebracht. Dadurch sehr 

 geschwächt, vermochten sie sich beim raschen Übergießen mit der 

 heißen Fixierflüssigkeit nicht mehr nennenswert zusammenzuziehen. 

 Bei älteren Tieren habe ich auch mit sehr gutem Erfolge Sublimat- 

 Salpetersäure zum Fixieren angewendet. 



Zum Einbetten der jungen Embryonen kam die Chloroform- Paraffin- 

 methode zur Anwendung. Alkohol wurde über Chloroform geschichtet, 

 und die Objekte so durch die Senkmethode in Chloroform übergeführt. 

 Hierauf wurden die Objekte in ein Chloroform- Paraffingemisch ge- 

 bracht, das Chloroform dann abgedunstet und die Tiere in reinem Pa- 

 raffin eingebettet und unter der Lupe mit einer heißen Nadel orientiert. 

 Für ältere Embryonen wurde die gewöhnliche Xyol- Paraffinmethode 

 benutzt. Bei ausgeschlüpften Tieren wurde der Genitalapparat heraus- 

 präpariert und in Nelkenölkollodium eingebettet. 



Die so eingebetteten Objekte wurden dann mit einem JuNGschen 

 Schlittenmikrotom nach Thoma in Serien von meist 4/t (seltener 

 6 — 7,5 fi) Dicke zerlegt und die Schnitte mit Eiweißglyzerin auf dem 

 Objektträger aufgeklebt. Besonders lästig erwies sich beim Schneiden 

 das Eiweiß in der Kopf blase und Magen-Leber der Embryonen; es 

 zersplitterte und machte die Schnitte unbrauchbar. Durch Einlegen 

 des angeschnittenen Paraffinblocks in Wasser machte ich das Eiweiß 

 durch Quellung weich, imd es wurde so ein glattes Schneiden ermöglicht. 



Zur Färbung der Schnitte wurde fast ausschließlich die Eisen- 

 Hämatoxylinmethode nach Heidenhain angewandt. Die Schnitte 

 wurden etwa 3 Stunden in Eisenammoniumsulfat gebeizt und dann 

 etwa 6 Stunden in V2%iger Hämatoxylinlösung gefärbt. Das Aus- 

 differenzieren erfolgte dann wieder in der Beizlösung. Seltener gebrauchte 

 ich Hämatoxylin nach Delafield zur Färbung. Eine Gegenfärbung 

 mit Eosin oder Orange-G. wurde nur bei Objekten angewandt, bei 

 denen histologische Differenzierungen eingetreten waren. Zur Färbung 

 der Totalpräparate des Genitalapparates erwies sich Alaunkarmin als das 

 beste. Derartig gefärbte Objekte in Nelkenöl aufgehellt, ermöglichten 

 auch innere Differenzierungen am Totalpräparat zu verfolgen. 



