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können schon Spuren von Luminescenz der auf Quarzobjektträgern liegenden und 

 eventuell in destilliertes Wasser gebetteten Präparate sehr bequem beobachtet 

 werden. Die oftmals in wundervoller Farbenpracht leuchtenden Objekte heben 

 sich hier von tiefdunklem Grunde ab. 



Den obigen, in Kürze wiedergegebenen Ausführungen des Verf. schließen 

 sich Kapitel an über die Theorien des Selbstleuchtens, über die Versuchsanord- 

 nung für visuelle Beobachtung und für photographische Aufnahmen und über die 

 Anwendungsmöglichkeiten des Luminescenz-Mikroskops. Weishaupt. 



416) Policard, A., La «fixation froide». In: C. R. de l'Assoc. des Anat., Bd. XV, 

 S. 41—47, 1913. 



La fixation des tissus par les reactifs histologiques met en jour deux sortes de 

 phenomenes: d'une part la penetration (diffusion) du reactif fixateur et d'autre part les 

 phenomenes autolytiques qui apparaissent dans les cellules centrales avant qu'elles ne 

 soient touchees par le liquide fixateur; la fixation ä des temperatures elevees accelere 

 bien Taction du fixateur, mais eile accelere plus encore l'autolyse et Talteration des cel- 

 lules centrales; au contraire, la fixation ä la glaciere aux environs de -f- 6° C. arrete 

 totalement les phenomenes de cytolyse et ralentit fort peu la penetration des reactifs. 

 Au point de vue pratique Policard soutient contrairement ä l'opinion de Rubenthaler 

 que la «fixation froide» est tres avantageuse pour l'obtention de bonnes figures histologiques. 



Faure-Fremiet. 



417) Kuli, H., Eine Modifikation der Altmannschen Methode zum 

 Färben der Chondriosomen. In: Anat. Anz., Bd. 45, Nr. 5/6, S. 153 — 157. 

 1913. 



Verf. beschreibt eine neue Modifikation der Altmannschen Methode, welche 

 in ihren Ergebnissen die Bendasche Methode übertrifft und dabei den Vorteil der 

 schnellen und sicheren Färbung hat. Er fixiert mit dem von Kopsch ursprünglich 

 zur Behandlung des Zentralnervensystems angegebenen Gemisch von doppelchrom- 

 saurem Kalium und Formalin; dann wird 3 — 4 Tage lang in der Lösung von 

 doppelchromsaurem Kalium ohne Formalin nachchromiert. Nach dem Chromieren 

 wird in fließendem Wasser ausgewaschen und eingebettet. Der genaue Hergang 

 der ganzen Färbung ist folgender: 



Färben unter Erhitzen bis zur Dampfbildung mit dem Altmannschen Säure- 

 fuchsin (20 g Säurefuchsin Grübler in 110 ccm Anilin wasser). Abkühlen und 

 Abwaschen der Farbe in dest. Wasser. Färben in einer gesättigten wässerigen 

 Thioninlösung (1—2 Min.), oder in einer 0,5 proz. wässerigen Toluidinblau- 

 lösung. Abspülen mit dest. Wasser. Differenzieren mit einer 0,5 proz. Lösung von 

 Aurantia in 70°/ Alkohol (20 — 40 Sek). Kontrolle unter dem Mikroskop. Ent- 

 wässern in 96°/ Alkohol. Absoluter Alkohol, Xylol, Balsam. Um eine bessere 

 Haltbarkeit der Präparate zu erhalten, benutzt Verf. von Merck bezogenen glas- 

 harten Balsam, den er in reinstem Benzol löst. Po 11. 



418) Vance, M., A new staining method for bile canaliculae. In: Anat. Anz., 

 Bd. 44, Heft 17, S. 413—414, 1913. 



Verf. gibt eine Technik zur Demonstration der Gallenkanälchen an : 

 1. Man fixiert am besten in einem der folgenden Gemische: a) Gleiche Teile Zen- 

 kersche Flüssigkeit ohne Eisessig und eine 10% wässerige Lösung von Formalin. 

 b) Gleiche Teile 10°/ Formalin und eine 5% wässerige Lösung von Quecksilberbichlorid. 

 2. Härten. 3. Einbetten in Celloidin. 4. Schneiden und die Schnitte 5—15 Minuten 

 lang in eine verdünnte Lösung von Jod in 96°/ Alkohol bringen. 5. Waschen in häu- 

 figer erneuertem 95°/ Alkohol um das Jod zu entfernen. 6. Färben 12—24 Stunden in 

 phosphor-wolframsaurem Hämatoxylin, 1900, Mallory, Journal of Experimental Medicine, 

 Nr. 5. 7. Direkt in 95% Alkohol bringen und waschen. 8. Aufhellen in Xylol-Carbol 

 oder Origanumöl. 9. Canadabalsam. Die Gallenkapillaren erscheinen als feine dunkel- 

 blaue oder schwarze Linien, während die Bindegewebsfibrillen rot gefärbt werden und 

 Zell- und Kernstrukturon klar hervortreten. Po 11. 



