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färben den Alkohol noch immer gelb, aber dies schadet bei den meisten 

 Färbungen gar nichts. 



Ich kann diese Methode jedem, welcher sich mit der Histologie 

 von Insekten und ihren Larven beschäftigt, nicht warm genug empfehlen. 



Mir hat diese Flüssigkeit immer vorzügliche Resultate geliefert, und 

 verschiedene üntersucher, welche diese Methode gebrauchten, waren 

 mit ihrem Erfolge sehr zufrieden. 



Die Vorteile vor den andern Methoden treten von selbst hervor. 

 Erstens ist die Fixierung eine sehr rasche; zweitens sehr bequem auf 

 Exkursionen auszuführen, da man ohne eine besondere Manipulation 

 die Tiere bequem in die Flüssigkeit werfen und am folgenden Tage mittels 

 Alkohol diese wieder vertreiben kann. Die Tiere sind immer viel 

 schwerer als die Flüssigkeit und sinken sofort, strecken sich gerade aus, 

 wie sie im Leben waren. Ein Beweis für die gute, schnelle Tötung ist 

 sicher, daß besonders im Centralnervensystem zahlreiche Kernteilungen 

 zu sehen waren, und man kann aus der Literatur ersehen, wieviel Streit 

 gerade dieser Punkt zwischen den verschiedenen Untersuchern verur- 

 sacht hat. Jetzt will ich in Kürze die verschiedenen Stadien der 

 Insekten besprechen, welche ich selbst zur Prüfung meiner Mischung 

 gebraucht habe. 



Die Fixierung der Insektentiere mit ihrer derben Chitinhaut bringt 

 allen Methoden große Schwierigkeiten, und bis jetzt ist eine gute Kon- 

 servierung von allen Eiern sicher noch nicht zu erwarten. Ich sah aber, 

 daß Nussbaum und Fui in sky ^ gute Eesultate mit Sublimat -f- HNO3 

 bei Eiern von PlujUodromia [Blatta) germanica hatten. Ich selbst habe 

 mit meiner eignen Mischung Eier von Biorhixa ajjtera, von einem 

 Nematus spec, von einem mir noch unbekannten Homopteron sehr 

 gut fixiert. 



Zahlreiche Larven habe ich nun schon mit diesem Gemisch be- 

 handelt, und aus folgendem wird man ersehen können, daß ich aus 

 verschiedenen Insektenordnungen Repräsentanten genommen habe. 



Von Hymenopteren nahm ich Larven von Isosoma und einigen 

 parasitischen Chalciden, von zahlreichen Gallenwespenarten; weiter 

 Larven von Coleopteren, Mecinus vülosulus und beccabungae, Tenebrio 

 monitor \ von Dipteren: Lipara lucens und rufitarsus^ Cecidomyia 

 rosaria, Chlorops taeniojjus, Chiroiiomus pliimosus. Am meisten findet 

 man Klagen über das Fixieren von den ersten Puppenstadien, und ich 

 kann mit Freude versichern, daß ich von den meisten dieser Tiere 

 Nymphen und vornehmlich Pronymphen gut erhalten habe, und auch 

 die Imagos gaben nicht viel Schwierigkeiten; da aber hier die ver- 

 schiedenen Gewebe fester sind als bei den Larven , machte ich meistens 



4 Zool. Anz. Bd. XXX. Nr. 11/12. S. 362. 



