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eine Öffnung in den Thorax, um das Eindringen der Flüssigkeit zu er- 

 leichtern. Auch Eosenläuse habe ich so behandelt, und dabei will ich 

 speziell darauf aufmerksam machen , daß die Embryonen im Abdomen 

 dieser Tiere auch schön erhalten waren und ebenso parasitische Larven, 

 welche sich in dem fixierten Tier der andern Insektenorden befanden. 



Meine Folgerung ist also, daß es absolut nicht nötig ist, allerlei 

 grobe Konservationsmittel zu gebrauchen, sondern daß man mit einer 

 viel einfacheren Methode (bequemer und) bessere Eesultate bekommen 

 kann. Man hat natürlich viel Insekten, welche selbst als Larven von 

 einer so derben Chitinhaut bedeckt sind, daß sie kaum oder gar nicht 

 verwendbar sind, aber bei der enormen Zahl der nicht untersuchten 

 Formen ist es bis heute noch ganz unnötig, diese Tiere zu bearbeiten. 

 Eine große Anzahl von den leicht zu studierenden Formen harrt der 

 Bearbeitung. Und wenn alle diese untersucht sind, und das wird wohl 

 noch viele Jahre in Anspruch nehmen, so werden gewiß die Methoden 

 für die Untersuchung der schwierigen gefunden sein. 



Unter den vielen untersuchten Insekten ist Tenehrio wohl diejenige 

 mit der derbsten Chitinhaut. Während des Druckes dieser Seiten 

 bekam ich die Arbeit von Saling^. Er gibt darin eine Methode zum 

 Fixieren der Larven an. Er kocht diese regelrecht mit Eau de Labar- 

 raque, und schreibt, daß er damit gute Eesultate bekommen hat. Früher 

 hatte ich diese Tiere mit Eau de Javelle behandelt, bekam aber keine 

 gute Fixierung. Die Organe waren nicht verschoben, doch in ihren 

 feineren Details sehr verzerrt. Leider stand mir kein Eau de Labarraque 

 zur Verfügung, um das Verfahren von Saling nachzuprüfen. 



Aber nach meinen Angaben sind die Tiere nicht so zu behandeln, 

 da das Chitin beim Schneiden keine Schwierigkeiten macht und man mit 

 meinem kalten Gemisch alles gut erhalten kann. Ich habe zur Prüfung 

 noch einige Larven von 1 — 2^2 cm behandelt und machte das Gemisch 

 etwas mehr sauer. Die Larven wurden mittels Benzol in Paraffin ein- 

 gebettet und die großen erst in zwei Stücke zerlegt. Dann konnte ich 

 von den kleineren Larven ohne Mühe Längsschnittserien bekommen und 

 von den größeren Querschnittserien von 6 — 8 /<. Man braucht nur ein 

 äußerst scharfes Messer, ein festes Mikrotom und Paraffin von 58 bis 

 60° anzuwenden. Das Chitin macht Beschwerden beim Fixieren, nicht 

 beim Schneiden, und ich habe mit dem angegebenen Pikrinsäuregemisch 

 eine gute Fixierung bekommen. Für Längsschnitte der erwachsenen 

 Larven, welche sicher wohl allein zur Orientierung nötig sein werden, 

 kann man die Methode von Saling sicherlich gut gebrauchen. Ich 

 weise weiter auf das, was Schwabe'^ über die Technik der Insekten- 

 histologen gesagt hat, hin. 



5 Zeitschr. f. wiss. Zool. Bd. 86. 1907. S. 238. 



