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man im Wasserbade oder Dampftopfe kurz bis zum Aufkoclien er 

 wärmt. Der Methylalkohol muß schwach alkalisiert sein. Man 

 erhält zuweilen ein Präparat, das infolj^e Oxydation zu Ameisen- 

 säure sauer reaji^iert. Für unsern Zweck empficlilt es sicli, mit Na- 

 tronlauge gegen l'lienoli)hthalein bis gerade zur schwachen Kotreaktion 

 einzustellen. Im allgemeinen sind auf 100 ce neutralen Methylalkohols 

 3 Tropfen Phenolphthalein (Iprozentige alkoholische Litsung) und 

 0*1 CG Normalnatronlauge oder besser Normalsodalösung zu verwenden. 

 Nacli der letzterwähnten Erwärmung der Farblösung kühlt man ab 

 und filtriert durch doppeltes Faltenfilter in eine mit Methylalkohol 

 ausgespülte glattwandige Flasche und gießt noch 50 cc Methylalkohols 

 «lurch das Filter nach. Diese neutrale Stammlösung ist monate- 

 lang haltbar und gegen Licht und Wärme sehr widerstandsf'äliig. 

 Nachträglich zuweilen auftretende Niederscidagsbildung ist durch 

 kurzes Aufkochen im Wasserbade und Zusatz von etwas Methylalkohol 

 (alkalisiertem) zu beseitigen. Zur Färbung dicker 'JVopfenpräparate 

 wird auf 10 bis 15 Tropfen Stammlösung 1 Tropfen ^/^q Normal 

 sodalösung zugefügt und dann aufs 20fache mit neutralem destilliertem 

 Wasser verdünnt. — Zur Färbung^ tpit Methylalkohol fixierter Ob- 

 jekte (Ulutausstriclic u. a.) wird kein Alkali zugesetzt und nur eine 

 15fache Verdünnung mit neutralem, destilliertem Wasser liergestellt. - — 

 Dicke Bluttropfen werden vor der Färbung in neutralem oder schwach 

 alkalischem Brunnenwasser ausgelaugt, um gleiclimäßige Durchfärbung 

 zu erreichen. Dazu genügen 20 bis 30 Minuten. Für fixierte Aus- 

 striche , die möglichst frisch und in dünner Schicht hergestellt sein 

 sollen, genügen etwa 30 bis 40 Minuten Färbedauer. Dieselbe Ver- 

 dünnung ist 3-, bis 4mal zu verwenden, wenn ein Färbekasten be- 

 nutzt wird. Auf diese Weise reiclien 4 cc Stammlösung zur Färbung 

 von etwa 80 Präparaten aus. — Die Methode hat sich besonders 

 bei Massenuntersuchungen dicker Tropfenpräparate bewährt. Die 

 Prä^)aratc sind sehr kontrastreich und niederschlagsfrei , die Zeich- 

 nung ist scharf. Die Kerne der Leukozyten sind schwarzviolett, die 

 neutrophilen Granula rot. Oxypliile Granula gelbrot, der ausgelaugte 

 Erythrozytenuntergrund ist durchsichtig blau, am Rande etwas rötlich. 

 Blutplättchen erscheinen als rote Körnchenhaufen, das Chromatin der 

 Parasiten ist leuchtend rot, das Plasma blaugrau. An Tropikagameten 

 sieht man den Rest des befallenen roten Blutkörperchens häufig als 

 rot gefärbtes Fähnchen haften. Spirochäten färben sich rotviolett. 

 Die basophile I^unktierung von Erythrozyten ist deutlicli. — Im 

 dünnen , fixierten Blutausstriche sind die ICrythrozyten gelbrosa, die 

 Kerne der Leukozyten gelbviolett, die neutropliilcn (iranula rot, das 

 Protoplasma der Lymphozyten blau, azuropliile Kügelchcn darin scharf 

 gefärbt. Die eosinophilen Granula sind gelbrot, Blutplättchen treten 

 als rote Tüpfel hervor. Die Einzelheiten der Malariaparasiten sind 

 in der für die Romanowsky- Färbung bekannten Weise sichtbar. 



Schiefferdccker {Bonn). 



