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Hollborn, K., Einiges über Teerfarbstoffe und Färben 

 mit ihnen in der mikroskopischen Technik 

 (Pharmazeut. Zeitg. Bd. 64, 1919, S. 145—146). 



Wegen ihrer Unlöslichkeit in Wasser müssen manche „neutrale" 

 Farben in Alkohol, bzw. Methylalkohol gelöst werden. Diese müssen 

 unmittelbar vor dem Gebrauch mit Wasser verdünnt werden. Man 

 färbt die Präparate in beginnender Schwebefällung. Hierzu wird 

 (z. B. für das eosiiisaure Methylenblau) Anweisung gegeben: Man 

 läßt die frisch hergestellten Ausstriche von Blut, Bakterien usw. 

 lufttrocken werden und träufelt dann so viele Tropfen der Farbstoff- 

 lösung darauf, daß sie ganz damit bedeckt sind. Der Methylalkohol 

 fixiert, jetzt den Ausstrich. Nach 3 bis 5 Minuten ist diese Fixierung 

 «rfolgt. Lungere Berührung des Ausstrichs mit dem konzentrierten 

 Alkohol schädigt die darauffolgende Färbung, die erst bei Zusatz des 

 destillierten Wassers (etwa gleiche Menge) eintritt. Diese Färbung 

 dauert 5 bis 10 Minuten. Viel zu wenig wird die Notwendigkeit 

 «iner Säurefreiheit des dann zum Abspülen benutzten Wassers beachtet. 



Hollborn wendet sich gegen die Benutzung der Tintenstifte 

 oder mit Farbstoffen getränkten Papierstreifen zur Herstellung der 

 Farbstotflösungen. Im gleichen Satz wirft er einerseits diesem 

 Verfahren den Mangel an Dosierbarkeit vor und betont anderseits 

 die Unnötigkeit der genauen Dosierung. ' 



Liesegahg {Frankfurt a. M.). 



Wilhelmi, J., Zur Technik mikro-und makroskopischer 

 Präparate (Zool. Anz. Bd. 48, 1917, S. 140—144). 

 Verf. wendet seine Quetschfixiermethode, die bisher nur für See- 

 tiere möglich war (s. diese Zeitschr. Bd. 27, 1910, S. 389), auch 

 auf Süßwassertiere an: er setzt ihnen entweder im Uhrglase oder 

 unter dem Deckglase langsam so viel Kochsalzlösung zu, daß der Salz- 

 gehalt etwa 1 bis 3 Prozent beträgt, und tötet sie dann über der 

 Gasflamme (S. 141). Jedoch darf es bei Erwärmung des Tragglases 

 nicht bis zu Blasen unter dem Deckglase kommen. Kleine Tiere 

 werden unter diesem weiterbehandelt, solche von 1 mm an nur 

 noch fixiert, dann aber wird das Deckglas abgenommen. Sehr kon- 

 traktile Tiere ziehen sich übrigens meist etwas zusammen. Für Proto- 

 zoen eignet sich die Methode im allgemeinen nicht, wohl dagegen 

 für Würmer. Rhabdocölen lassen sich nach der Tötung auch mit 

 Salpetersäure (wie stark?) fixieren und müssen von da gleich in 96pro- 

 zentigen Alkohol gebracht werden (S. 142). Bei den stark schleim- 

 absondernden paludicolen Tricladen versagte die Methode, hier wird 

 Salpetersäure nach Kennel oder Steinmann (1908) nötig. Kleine 

 und mittelgroße Oligochäten werden auch ohne Kochsalz gut getötet 

 (S. 143) und liefern „prächtige Übersichtsbilder". Auch Nematoden 

 sind der Methode zugänglich. P, Mcuyei' {Jena). 



