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coup à la transparence des gros spécimens qu'on désire monter 

 entiers. 



Les autres détails concernant la coloration, les coupes, etc.,. 

 rentrent dans la technique microscopique courante. 



J'ai essayé quelquefois de dilacérer des Vers colorés dans le 

 baume du Canada, au moment du montage ; on n'obtient pas 

 d'organes entiers, mais souvent d'excellents fragments (ovaires, 

 œufs, spermathèques, spermatopliores, parties de l'appareil 

 déférent mâle), qui ont le grand avantage d'être bien isolés. 



Les soies s'étudient le mieux dans l'eau ; les milieux éclair- 

 cissants diminuent leur netteté. Cependant, il faut aussi en faire 

 des préparations durables. Voici un excellent procédé : mettre 

 l'animal vivant sous le porte-objet avec de l'eau ; éviter qu'il y 

 ait des bulles d'air; enlever une partie de l'eau, et laisser à 

 l'évaporation le soin de faire le reste. La compression devient 

 de plus en plus forte, l'échantillon s'écrase, s'aplatit si bien 

 qu'on obtient à la fin les téguments vides avec toutes les soies 

 en place. Mais il faut surveiller la marche de l'opération, car à 

 un moment donné l'air entre brusquement sous le couvre-objet ; 

 prévenir cet accident en mettant à temps une goutte de glycé- 

 rine. Pour que la préparation soit parfaite, il faut qu'aupara- 

 vant le Ver ait entièrement vidé son intestin, faute de quoi 

 l'aplatissement complet ne peut avoir lieu. 



n. SYSTÉMATIQUE 

 J'ai eu l'occasion d'observer les espèces et variétés suivantes : 



1. Paranais uncinata Ovsl. 8. Naidium pluiiscta nov. sp. 



"2. Chaetogaster diastrophus Gruilh. 9. Naidiuïii tentactdatumnov. sp. 



3. Chactogaster LanfiiBrelscher. 10. Nnidium Foreli noY.sp. 



4. Chnetogaster crystallinus \e']d. 11. Nnidium roseum nov . sp. ?■ 



5. Chnetogaster diaphanns Gruilh. (? = N. iuteuni 0. Schm.) 



6. Chaetoguster limnaei K. Baer. 12. Nais Josinae Yejd. 



7. Ophidonais serpentina Mùll. \ar. 13. Nais Blanci nov. sp. 



meridionalis nov. var. 14. N»is obtnsa Gerv. 



