Beiträge zur Anatomie der Leuchtorgane tropischer Käfer." 241 



konserviert war und eine nachträgliche Schwärzung mit Osmium auch 

 nach der Holzessig-Osmium-Methode Bongaruts nicht gelang, so 

 konnte das Material leider nicht zum Studium der Tracheenendzellen 

 herangezogen werden. Dafür aber leistete es sowohl beim Studium 

 des allgemeinen Aufbaues der Leuchtorgane, als vor allem bei dem der 

 Nerven sehr gute Dienste. 



Das Material von Prof. v. Jhering war auf meinen Vorschlag 

 hin mit Osmiumsäure ^/3% 24^ — 48 Stunden fixiert, in destilliertem 

 Wasser ausgewaschen und dann bis in 80% Alkohol überführt worden, 

 andre Exemplare waren in Sublimat-Alkohol-Eisessig oder Pikrin- 

 säure konserviert. Sämtliche Fixierungen, vorab aber die mit Osmium- 

 säure, erwiesen sich als durchaus brauchbar. . 



Die ersten Exemplare von Lam'pyris splendidula waren ganz ge- 

 schnitten worden. Es erwies sich aber bald, daß trotz mehrwöchent- 

 licher Behandlung mit Seifenspiritus und Celloidin keine vollständigen 

 und histologisch einwandfreien Schnittserien erzielt werden konnten, 

 da das Chitin auch nach dieser Behandlung noch splitterte. Es wurden 

 daher die Leuchtorgane der brasilianischen und afrikanischen Leucht- 

 käfer herauspräpariert, was verhältnismäßig leicht gelingt, da die 

 Leuchtorgane dem Chitin direkt anliegen und leicht abgehoben werden 

 können. Schwieriger war immerhin die Präparation der Thoracal- 

 leuchtorgane von Pyrophorus noctUuca, da das Chitin bei weitem 

 härter ist als bei den Lampyriden. Ferner geschieht es leicht, daß beim 

 Einstechen von Nadehi der Thorax der Länge nach spaltet und eine 

 weitere Präparation in Frage stellt. Es wurden daher Kopf und Tho- 

 rax in Paraffin eingeschmolzen und das Chitin Stück für Stück mit 

 einer Präpariernadel abgesprengt. Die Präparation des Bauchleucht- 

 organes wurde von der Dorsalseite her vorgenommen und gestaltete 

 sich bei den gut konservierten Tieren ziemlich leicht, nur bereitet das 

 Abheben der dünnen ventralen Chitindecke einige Schwierigkeit. 



Die herauspräparierten Organe wurden dann in Alkohol überführt, 

 im absoluten Alkohol vorsichtig Cedernholzöl hinzugegeben und kamen 

 schUeßUch je 8 — 12 Stunden in Cedernholzöl -j-48° Paraffin und Cedern- 

 holzöl -h58° Paraffin. Endhch wurden sie noch 4 — 12 Stunden in 60° 

 Paraffin übertragen, eingebettet und geschnitten. Das Cedernholzöl 

 wurde angewandt, um ein Spröde werden der Objekte möglichst zu 

 vermeiden. Trotzdem rissen die Schnitte öfters und es wurde daher 

 jeder Schnitt mit Mastix-Collodium überstrichen. Nur auf diese Weise 

 konnten lückenlose, einwandfreie Schnittserien erzielt werden. Ge- 

 färbt wurden die Schnitte mit Hämalaun und Hämatoxylin, wobei das 



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