Die Embryonalentwicklung von Donacia crassipes L. 629 



Mischung von 3%iger wässeriger Salpertsäure und gesättigter, wässeriger 

 Sublimatlösung ä pari, die sich für die Fixierung sämtlicher Stadien 

 sehr geeignet erwies und die ich schon während meiner Untersuchungen 

 an Lepidoptereneiern ausprobiert habe. Hierauf passierten die Kokone 

 eine Reihe von Alkoholen bis zum 90%igen Alkohol, wobei sie in einem 

 jeden von ihnen 24 Stunden verweilten. Im 90%igen Alkohol wurden 

 die Kokone teüs in einige Stücke, von denen jedes acht bis zehn Eier 

 enthielt, zertrennt, teils wurden aus ihnen die Eier herausgeschält und 

 freigelegt. Die ersteren verwandte ich zur Anfertigung der Schnitt- 

 serien, die freigelegten Eier aber zur Besichtigung der Keimstreifen, 

 in toto. Die Kokonstücke brachte ich danach auf 24 Stunden in eine 

 0,5%ige wässerige Thioninlösung, während ich von den herausgeschälten 

 Eiern das Chorion mittels spitzer Nadeln entfernte und sie in dieselbe 

 Farblösung auf 2 bis 3 Stunden oder in Boraxkarmin auf 24 Stunden 

 einlegte. Die mit Thionin gefärbten Kokonstücke und Eier wurden 

 später 24 Stunden in 96%igfem Alkohol differenziert, wonach die Keim- 

 streifen dunkelblau gefärbt erschienen, während der Dotter und die 

 EihüUen fast vollkommen die Farbe abgegeben haben. Dagegen 

 die mit Boraxkarmin gefärbten Eier differenzierte ich 24 bis 48 Stunden 

 in angesäuertem 96% igen Alkohol, nach welcher Frist der Dotter 

 und die EihüUen fast gänzlich entfärbt wurden, die Keimstreifen aber 

 ihre dunkelrote Farbe beibehalten haben. So differenzierte und nach 

 Passierung des absoluten Alkohols in Xylol untergebrachte Keimstreifen 

 erwiesen sich zum Studium der äußeren Veränderungen, also des Seg- 

 mentierungsvorganges und der Entwicklung der Extremitäten als voll- 

 kommen geeignet. Die differenzierten Kokonstücke, an denen man 

 sich über die Lage und Alter der Keime orientieren konnte, wurden aus 

 dem 96° igen Alkohol auf 24 Stunden in absoluten Alkohol, später auf 

 dieselbe Zeit in Xylol eingelegt, wonach ich sie in eine gesättigte Lösung 

 von Paraffin in Xylol auf 12 Stunden brachte. Hierauf verweilten 

 letztere 1 bis 2 Stunden im Brutschrank in reinem Paraffin, wonach 

 sie sich schnittfähig zeigten und in 5 bis 6 ^< dicke Schnitte zerlegt 

 wurden. Die erwähnte Schnittdicke erschien zum Studium der Ent- 

 wicklungsvorgänge vollkommen zureichend, so daß man auf dünnere 

 Schnitte verzichten konnte. Zur Färbung der Schnittserien, aus denen 

 vorher das Thionin mittels 96 %igem Alkohol entfernt wurde, gebrauchte 

 ich Kernfarbstoffe, wie DELAFiELDsches Hämatoxylin und Hämatein, 

 in einigen Fällen auch Hämalaun, die ich mit Fuchsin-Orange oder 

 Eosin kombinierte. Als Tinktionsmittel wandte ich auch einige Male 

 metachromatische Farbstoffe, wie Thionin und polychromes Methylen- 



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