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mit Laubunterlage und gelegentlich im Humus oder im Moos. Es erwies sich als praktisch 

 niethode, draußen nach Proturen zu suchen und von dem Materiale, das solche beherbergte, größere 

 Quantitäten einzutragen. Bei der Untersuchung daheim auf schwarzer Unterlage kann man dann 

 leicht die Proturen mit bloßem Auge erkennen und an ihrer durchscheinenderen Farbe und gleich- 

 mäßigen Bewegung von ebenso großen Collembolen unterscheiden. 



Zur Aufbewahrung lebenden Materials eignete sich vor allem die Überführung in ein flu- i 

 .Medium, da auf diese Weise ein Vertrocknen sicherer vermieden wird, als durch die Unterbringung 

 in einer leuchten Kammer. Überdies lassen sich die mit dem feuchten Pinsel aufgenommenen Tiere 

 leichter unbeschädigt in einer Flüssigkeit, als auf einer festen Unterlage abstreifen. Versuche mit 

 Leitungswasser, destilliertem Wasser, physiologischer Kochsalzlösung und Ringerscher Flüssigkeil 

 zeigten bald die Überlegenheit der letzteren. In Wasser pflegten die Tiere schon nach relativ kurzer 

 Zeit zu verquellen und dann allmählich abzusterben. Kochsalzlösung erwies sich als etwas geeigneter, 

 doch überstanden auch hierin nur wenige Exemplare den dritten Tau. Vorzüglich dagegen waren 

 die Ergebnisse mit Ringerscher Flüssigkeit, in welcher die Tiere (besonders Acerentomon) sich bis zu 

 zwei Wochen hing lebend erhalten ließen, und in der vor allem auch die sonst außerordentlich 

 störende Pilz- und Bakterienwucherung fast ganz unterblieb. 



Methoden. 



Das Exoskelett von Eosentomon zeichnet sich durch seine große Durchsichtigkeit aus. Auf einer 

 glashellen Chitinmembran liegen die einzelnen Chitinplatten oder Sklerite verstreut, von ihrer Um- 

 gebung nur durch etwas größere Dicke und einen leichten Hauch von Gelbfärbung unterschieden. 

 Diese Unterschiede sind zu gering, um eine sichere Grenze der einzelnen Hartgebilde danach fest- 

 zustellen. Immerhin wurde von der Beobachtung lebender Tiere, die sich in Wasser leicht bewerk- 

 stelligen läßt, ausgiebig Gebrauch gemacht; die so gefundenen Resultate wurden aber geprüft und 

 ergänzt durch Untersuchung zweckmäßig gefärbter Dauerpräparate. 



Zur Färbung des Chitins habe ich verschiedene Methoden angewandt. Unzureichend waren 

 in den meisten Fällen die Resultate mit Eosin und Methylenblau in wässrigen oder alkoholischen 

 Lösungen; ebenso gaben Eosin und Pikrinsäure in Nelkenöl gelöst oft keine klaren Bilder, was durch 

 die einerseits zu gleichmäßige, andrerseits zu schwache und wenig haltbare Färbung bedingt war. 

 Ausgezeichnete Resultate erhielt ich dagegen mit Wasserblaufärbung. Die Tiere wurden in sta 

 Kali- oder Natronlauge auf dem Thermostaten bei etwa 40° gehalten und waren, wenn man sie vorher 

 angestochen hatte, nach einiger Zeit völlig von allen Fleischteilen befreit. War es nicht möglich, 

 Irische Tiere in die Lauge zu werfen, so beschleunigte eine vorangehende Quellung in leicht erwärmtem 

 Eisessig die Reinigung des Skelettes wesentlich. Die gründlich in 40prozentigem Alkohol abgespülten 

 Häute wurden dann vorsichtig in Wasser gebracht und weiter in die Farbflüssigkeit übertragen. Als 

 solche diente eine o,25prozentige Lösung von Triphenylrosanilintrisulphosaurem Kalk in konzen- 

 trierter wässriger Pikrinsäure, welche mit einigen Tropfen Salzsäure versetzt wurde, um etwaige 

 Reste von Lauge in den zu färbenden Objekten zu neutralisieren. Nach mehrtägigem Aufenthalte 

 in der Farbe wurden die tingierten Häute rasch gewässert und durch die Alkoholreihe in Nelkenöl 

 gebracht, und konnten in diesem, da es den Farbstoff nicht herauslöst, beliebig lange aufbewahrt 

 werden. Gut bewährte sich auch eine Färbung mit etwa 0,5prozentiger Lösung von Wasserblau 

 in angesäuertem Alkohol von 96 °/ . nachfolgendes Spülen in 96 prozentigem Alkohol und Über- 



