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Icli betonte schon in der ersten Arbeit, daß die richtige Orientierung sämtlicher Entwicklungs- 

 stadien der Knospenähren und dieser selbst vor dem Schneiden von Wichtigkeit ist, da Schlägschnitte 

 Bilder liefern, die zu ganz irrigen Vorstellungen führen können. 



Infolgedessen mußten die Larven der Cunina parasitica einzeln mit feinen Nadeln aus dem 

 Gewebe der Geryoniden herauspräpariert werden, ebenso die Entwicklungsstadien der zweiten Gene- 

 ration der Cunina proboscidea aus dem mütterlichen Gewebe. 



Dies geschah, nachdem die genannten Wirtstiere in mehrere Stücke zerschnitten worden 

 waren und die einzelnen Stücke längere Zeit in Nelkenöl gelegen hatten. 



Wie ich schon mitgeteilt habe, verändert diese Behandlung die Konsistenz der Gewebe der 

 Wirts- oder Muttertiere sowie die ihrer Parasiten, bzw. ihrer Brut derart, daß es bei einiger Übung 

 unschwer gelingt, die Larven zii isolieren. Jedenfalls habe ich auf diese Weise eine ganze Reihe 

 sauberer Präparate erhalten, 



unterläßt man die Vorbehandlung mit Nelkenöl, so ist die Herauspräparation schwierig; 

 in den Fällen, in denen sich die Cunina parasitica-Larven, bzw. die Knospenähren vermittelst 

 Wucherungen (1. c. 1911 S. 237 Taf. VII Fig. 20, Taf. VIII Fig. 21, 22) im Gewebe ihrer Wirtstiere 

 verankert haben, ist es überhaupt unmöglich, sie unverletzt herauszubekommen, da regelmäßig 

 der proximale, die Phorocyte enthaltende Abschnitt beschädigt wird oder abreißt. 



Die Cunina-Larven, sowie die jüngeren Knospenähren wurden sämtlich in Nelkenöl-Collodium 

 überführt, nach 12 Stunden im Tropfen auf Glasplättchen montiert, unter der Lupe orientiert, hierauf 

 durch Chloroform oder Xylol vom Nelkenöl befreit und schließlich in Paraffinblock geschnitten. 



Folgende Färbungsmethoden kamen zur Anwendung: 



1. die Heidenhainsche Eisenhämatoxylinfärbung; Nachfärbung mit sehr verdünnten alkoho- 

 lischen Orange G-, Fuchsin S-Lösungen. 



2. Die Färbung in einem Methylgrün- (Jodgrün, Malachitgrün) Fuchsingemisch, dem etwas 

 Ameisensäure zugesetzt ist. Das Gemisch muß eine violette Farbe besitzen. 



3. Zwei von G. Pianese (1895) empfohlene Farbengemische: 



a) Saures Hämatoxylin von Ehrlich 15 ccm. 



l%ige Lösung von Fuchsin S in 70% Alkohol 15 ccm. 

 Destilliertes Wasser 15 ccm. 



b) Malachitgrün 50 cg; 

 Fuchsin S 10 cg; 



Gelb von Martins 1 cg; 

 Destilliertes Wasser 150 ccm; 

 96% Alkohol 50 ccm. 

 Diese Lösung ist erst nach einigen Tagen brauchbar; ich fand es empfehlenswerter, sie mit 

 Alkohol noch stärker zu verdünnen (ca. 54)> ^^ man. hierdurch progressive Färbungen erzielen kann. 

 Die genannten Methoden gestatteten mir weiteren Einblick in das Wesen der Degeneration 

 der Phorocyte. Besonders schöne, leider aber sehr vergängliche Bilder lieferte mir die Schnittfärbung 

 mit den unter 2 und 3 b genannten Farbmischungen. 



Ich habe mir daher in den Fällen, in denen es mir auf exakte Nucleinfärbung ankam, farbige 

 Skizzen nach dem frisch gefärbten Objekt angefertigt. Dies ist bei der Größe unserer Phorocyten, 

 die schon bei Anwendung schwacher Linsensysteme zahlreiche intime Charaktere erkennen lassen, 

 ein leichtes. 



