Pinsel. Larvc-n und fiiscli gehäutete Tiere l^ietcn dem Messer überhaupt keine Schwierig- 

 keiten; n-cgenteilige Erfahrungen können nach meiner Ansicht nur in der mangelhaften 

 Technik des Bearbeiters ihren Grund haben. 



Vielfach habe ich gelesen, auch Meyer und Lee empfehlen es in ihrer mikroskopi- 

 schen Technik (Grundzüge der mikroskop. Technik, 1898, p. 260 und 391), daß die Präparate, 

 um das Chitin aufzuweichen und dadurch schneidbarer zu machen, womöglich tagelang in 

 Eau de [avclle, Eau de Labarraque oder gar in erwärmte Kalilauge gelegt wurden. Daß es 

 nicht möglich ist, an so malträtierten Objekten histologische Feinheiten zu studieren, ist wohl 

 klar; ich möchte von solchen Präparaten noch nicht einmal eine Beschreibung der Chitin- 

 teile geben, wenn sie auf Genauigkeit Anspruch machen soll. 



Mehr Schwierigkeit als das Schneiden hat das Festhalten der Schnitte auf dem Objekt- 

 träger verursacht. Konstant wurden anfänglich die Chitinleisten, auch wenn die Schnitte 

 noch so schön geglättet waren, durch die Diffussionsströme fortgeschwemmt. Diese Kalamität 

 fiel vollständig fort, als i(-h nach der Angabe Hesses (Zeitschr. f. wiss. Zoologie, Bd. 70, 

 p. 349) die Schnitte mit Photoxylin überzog. Hesse empfiehlt eine 1,1 — i,-prozentige Lösung 

 von Photoxylin in absolutem Alkohol und Äther aa. In diese Lösung werden die Tafeln 

 nach dem Auflösen des Paraffins und dem Überführen in absoluten Alkohol gebracht, und 

 ich kann bestätigen, daß der Photox)'linüberzug den Färbungsprozeß nicht im geringsten 

 stört. Das Wiederentfernen des Photoxylins vor dem Aufhellen in einer gleichteiligen 

 Mischung von abs. Alkohol und Äther hat sich als unnötig erwiesen, weil es beim Differen- 

 zieren vollständig entfärbt wird. Auf solchem Wege lassen sich dünne Schnitte (bis zu 5 \j) 

 ausgezeichnet festhalten. Bei dickeren Schnitten, besonders bei 10 ^l imd darüber, schwimmen 

 die Chitinlcisten gewöhnlich schon Ix'im Auflösen des Paraffins fort. Diesem Übelstande 

 kann man dadurch vorbeugen, dafi man die trockenen Tafeln vor dem Einbringen in Xylol 

 mit der Photoxylinlösung überzieht. Da der Äther selten wasserfrei ist, kommt es dann 

 allerdings zuweilen \or, daß sich beim Einführen der so behandelten Tafeln in das Xylol 

 eine weißliche Trübung bildet, die ein Auflösen des Paraffins verhindert. In diesem Falle 

 hält man die Tafel einen Moment in absoluten Alkohol und bringt sie dami in Xylol zurück. 

 Das Paraffin wird mit dem Photoxylinüberzug fast ebenso schnell gelöst wie ohne denselben. 

 Unter Anwendung dieser einfachen Methoden habe ich vollständige, bis zu 20 ^ dicke 

 Schnittserien erhalten. 



Konserviert wurde in starken Gemischen von Flemming und Hermann (Konservierungs- 

 zeit 24 Stunden und 12 — 24 Stunden wässern). Ferner habe ich mit ausgezeichnetem Er- 

 folge auf den Rat des Herrn Professor Chun Formolgemische angewandt imd zwar Forrnal- 

 Chrom-Essigsäure sowie Formol-Alkohol-Essigsäure in der von Meyer und Lee p. 53 an- 

 gegebenen Zusammenstellung. Besonders das Formol-Chromsäuregemisch fixiert die Zell- 

 formen besser als Flemming. Da von Meyer und Lee keine Konservierungszeit angegeben 

 ist, will ich bemerken, daß für meine Präparate 6—8 Stunden die günstigste Zeit war. 

 Präparate, welche länger als 8 Stunden in Formol lagen, bekamen auf Schnitten ein glasiges, 

 homogenes Aussehen, sie erschienen, wie auch Meyer und Lee angeben, wie osmiert. Formol- 

 Alkohol eignet sich sehr gut zur heißen Konservierung (ich habe damit z. B. Corethralarven 

 ganz vorzüglich erhalten), während das Chromgemisch nicht erwärmt werden darf, da das 

 Formaldehyd dann sofort seine stark reduzierende Wirkung ausübt und die gelbe Chrom- 



