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matières en digestion) et plongé pendant douze heures environ 

 dans la solution suivante : 



Eau distillée 30 parties 



Alcool à 95° 15 » 



Formol 5 



Acide acétique cristallisable 1 à 2 



Ce fixatif nous a donné des résultats surprenants et nous ne 

 saurions trop le recommander à tous ceux qui voudraient étudier 

 le tube digestif des Poissons. Il en donne de meilleurs même que 

 le sublimé acétique ou que la solution de BouiN, qui, cependant, 

 sont utilisés généralement pour la fixation des épithéliums. Nous 

 avons employé aussi, .à titre d'essai, un mélange en parties égales 

 d'alcool absolu et de formol, et, plus simplement, de l'alcool à 

 95°. Ces deux fixatifs ne sont pas mauvais, mais sont loin de 

 valoir ceux que nous avons indiqués en premier lieu. 



La coloration in Mo a toujours été faite au moyen du carmin 

 boracique en solution alcoolique et la coloration sur coupe au 

 moyen de l'hématoxyline de Delafield. Ce réactif est néces- 

 saire pour indiquer nettement la présence de certains éléments, 

 tels que les celllules caliciformes ; en outre, il renforce légèrement 

 la coloration des membranes des autres cellules épithéliales. 

 On peut se servir également dans le même but du brun de 

 Bismarck, et la rosaniline, principalement dans la coloration 

 des tuniques musculaires, rendra aussi quelques services. 



Nous avons porté toute notre attention sur l'orientation des 

 coupes que nous avons pratiquées au travers de la muqueuse 

 intestinale ; il est important, en effet, que les cellules soient cou- 

 pées selon un axe bien déterminé. Ainsi, lorsqu'il s'est agi 

 d'étudier l'histologie d'un des replis de la muqueuse, nous avons 

 eu soin, en pratiquant de chaque côté de ce repli une incision 

 longitudinale, de le détacher avec une fraction de ses différentes 

 tuniques, et de l'emparaffiner séparément. De cette façon il était 



