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actuelles sont en effet fixés par l'hérédité, depuis le long espace de temps où 
ces conditions sont réalisées). 
M. CAULLERY. 
13.108. MARINESCO, G. et MINEA. J. Essai de culture des ganglions 
spinaux de mammifères tn vitro. Anatom. Anz., t. 42, 1912 (161-176, 
8 fig.). 
Par le procédé de culture en plaques, dans du plasma auto- et homogène, 
suivant la méthode de CarREL, les auteurs ont constaté qne la cellule nerveuse 
vivante peut produire, de par sa capacité de croissance intrinsèque, des 
fibres nerveuses nouvelles qui arrivent à sortir du ganglion et s’insinuent 
assez loin dans un milieu approprié quelconque. La progression de ces fibres 
est assez laborieuse, leur trajet irrégulier, sinueux ; mais si elles trouvent 
l'appui d’autres éléments cellulaires qu’elles peuvent aborder selon leurs divers 
tropismes et accompagner sur une certaine longueur, la croissance est plus 
régulière, et les fibres, au lieu de s’épuiser en s'épaississant sur place, gardent 
un calibre fin et cheminent en ligne droite vers les points où elles doivent 
aboutir, A. DRZEWINA. 
13.109. OPPEL, Arserr. Causal-morphologische Zellenstudien V. Die 
aktive Epithelbewegung, ein Factor beim Gestaltungs- 
und Erhaltungsgeschehen. (Études cellulaires de déterminisme 
morphologique. V. Le mouvement épithélial actif, facteur de conservation et 
de morphogénèse). Arch. Entwichl. mech., t. 35, 19 12 (371-456,pl. 8). 
Les résultats de ces recherches ont déjà été signalés (V. Bibliogr. evolut., 
n° 12. 300). À. donne ici le détail de ses observations sur divers tissus 
épithéliaux de chien, de chat et de lapin conservés dans du sérum à l’étuve. 
Les mouvements d'ensemble de l’épithélium lui paraissent un processus qui 
doit intervenir d'une façon très générale dans les phénomènes normaux, et avoir, 
tout autant que la multiplication des cellules, un rôle important dans la 
morphogénèse des feuillets embryonnaires. CHIPERES 
13.110. GOLDFARB, A. J. Studies in the production of grafted embryos. 
(Recherches sur la production d’embryons greffés). Biolog. Bulletin, t. 24, 
1913, (p. 73-101, 9%6 fig.) 
G. agite violemment des œufs d'Arbacia, 2-3 minutes après la fécondation, 
de façon à faire éclater leur membrane; il les place alors dans l'eau de mer 
sans Ca (formule de Van’r Horr) préparée avec de l’eau distillée dans le cuivre 
ou le verre, et additionnée de 4-12 gouttes de solution de NaOH à 0,5 ° (par 
200 cc de la solution): on y laisse les œufs jusqu'au {er clivage, puis on les 
transporte dans des tubes étroits (3mm de diamètre intérieur environ), où on 
les centrifuge 3 à 5 minutes à 30 tours par minute; puis on les remet dans 
l'eau de mer. Les œufs et embryons s’agglutinent (cette méthode est une 
modification de procédés précédemment employés par Hergsr et par DRIESCH, 
Arch. f. Entw. mech.). — Description des résultats. — G. à agglutiné jusqu'à 
20 embryons ou blastomères. Dans les grands aggrégats, les composants 
externes tendent à‘se séparer, les internes meurent facilement. Quand il y a 
simple aggrégation, les composants se développent indépendamment. Il y a 
fréquemment fusion des composants, soit au stade œuf, soit au stade blastula 
ou plus tard. Cette fusion a lieu seulement pour la paroi extérieure ou pour 
tout ou partie des organes internes ; suivant l'orientation relative des com- 
posants fusionnés, les archenterons évoluent de façons diverses. Plusieurs œufs 
