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Infektion ist znnächst intracelhilär und zwar werden die Ganglienzellen des Central- 

 nervensystems, aber auch benachbarte Bindegewebszellen befallen. Später finden 

 sich die Parasiten als Cysten auch intercellulär. Indem mehrere Cysten ver- 

 schmelzen, entstehen ansehnliche kugelige Gebilde, die in größerer Anzahl zu- 

 sammenliegend traubenförmige Tumoren an den Nerven bilden. 



Technik der Untersuchung. 



Um lebende Cnidosporidien zu untersuchen ist es nötig, sie in demselben 

 oder einem ähnlichen Medium zu lassen, in welchem sie unter natürlichen Be- 

 dingungen vorkommen. Arten, welche die Körperhöhlen ihrer Wirte bewohnen, 

 untersucht man am besten in den entsprechenden Flüssigkeiten, z. B. Bewohner 

 der Harnblase im Harne, Bewohner der Gallenblase in der Gallenflüssigkeit ihrer 

 Wirte. Andernfalls kann man zum Ersätze und bei Gewebsbewohnern physio- 

 logische (%%) Kochsalzlösung verwenden. In diesen Flüssigkeiten werden die Para- 

 siten vermittels einer Pipette oder eines Spatels auf einen Objektträger gebracht 

 und ein durch sogenannte Wachsfüßchen gestütztes Deckglas darübergelegt. Sehr 

 lange halten sich die Parasiten meist nicht, und es ist sehr darauf zu achten, ob 

 die beobachteten Erscheinungen (z. B. Teilung oder Knospung) an lebensfrischen, 

 oder an absterbenden Exemplaren sich vollziehen. 



Zur Konservierung sind inehrere Flüssigkeiten geeignet. Gute Ergebnisse er- 

 zielt man meist mit Sublimatgemischen, wovon besonders die von Schaudinn 

 angegebene Mischung von gleichen Teilen konz. Sublimat und Alkohol absol. her- 

 vorzuheben ist. Oft ist ein Erwärmen dieser Gemische vor dem Gebrauch rat- 

 sam. Von anderen Gemischen sei hier noch das FLEMMiXG'sche angeführt, das be- 

 sonders zur Erhaltung der Plasmastrukturen geeignet erscheint. 



In diese Gemische läßt man die von den Parasiten infizierten, nicht zu großen 

 Gewebsstücke hineinfallen. Bei infizierten Gallen- oder Harnblasen empfiehlt es 

 sich in dieselben mit einer Pipette die Fixierungsflüssigkeit zu injizieren, indem 

 man die Blase zugleich in die Flüssigkeit hineinlegt, oder unter dem Fixierungs- 

 gemisch aufschneidet, um ein schnelleres Eindringen in die Blase zu ermöglichen. 

 In manchen Fällen erzielt man dadurch gute Ergebnisse, daß man die Parasiten 

 besonders der Gallen- oder Harnblase mit den betreffenden Flüssigkeiten auf ein 

 Deckglas in dünner Schicht aufstreicht und das Deckglas mit der bestrichenen 

 Seite nach unten auf die Fixierungsgemische fallen läßt. Diese Methode eignet 

 sich besonders für kleinere Arten. Die weitere Behandlung, Färbung usw. geschieht 

 wie bei Schnitten. Zur Herstellung von Dauerpräparaten der fixierten ganzen 

 Parasiten sind verschiedene Färbungsmethoden anwendbar, wie Hämatoxylin nach 

 Delafielu, Grenaciier oder Ehrlich, Hämalaun, Eisenhämatoxyhn nach Heidex- 

 HAiN, sowie verschiedene Karminfärbungen. 



Außer Totalpräparaten wird in den meisten Fällen die Untersuchung von 

 Mikrotomschnitten nötig sein. Zur Färbung derselben empfehlen sich: Hämatoxylin 

 mit oder ohne nachfolgende Eosinfärbung, Eisenhämatoxyhn nach Heideniiain oder 

 nach VAN Gieson-Weigeut, GiEMSA-Gemisch in der von v. Piiowazek (1907) an- 

 gegebenen Weise. Zur Färbung der in den Schnitten vorhandenen Sporen von 

 Myxosporidien sind außer den ebengenannten noch gut: Safranin und Gentiana- 

 violett (nach Fixierung mit Flemming's Gemisch), sowie, nach Durchfärbung der 

 Objekte mit Boraxkarmin, Schnittfärbung mit Thionin. 



Das Ausschnellen der Polfäden, daß natürhcherweise durch die Magen- und 

 Darmsäfte der Wirtstiere hervorgerufen wird, kann man durch verschiedene Mittel 

 bewirken. Von den vielen angeführten Methoden, die indessen nicht immer ge- 

 lingen, sei hier angeführt: Glycerin, Äther, Salzsäure, Salpetersäure, längeres Liegen 



