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jamais atteindre i'ébullilion et on regarde si la couleur pâlit. Puis, 

 on arrose le porto-objet par-dessous, au moyen d'une pipette, 

 pour le refroidir vite et complètement et on observe au microscope 

 si la couleur est redevenue plus foncée. Quand l'objet à étudier 

 est assez grand, il est plus simple de comparer les nuances à l'œil 

 nu, en posant la préparation sur un papier blanc: on évite ainsi 

 la buée qui obscurcit le champ microscopique autour de l'objet 

 chaufïé. 



S'il est permis de tenir pour du glycogène une substance qui a 

 tous les caractères optiques, physiques et chimiques que je viens 

 de rapporter, il ne suffit pas, en revanche, que l'une ou l'autre des 

 réactions ne se produise pas pour qu'on soit sûr qu'un tissu ne 

 renferme pas de petites quantités de glycogène. Dans les tissus 

 compacts, la couleur brune disparaît difficilement à chaud et réap- 

 parait plus difficilement encore par le refroidissement. » 



Il est bon de rappeler que la présence d'une certaine proportion 

 d'alcool empêche la coloration du glycogène par l'iode. 



Dans l'alcool absolu et même dans l'alcool à 80 "/o ou à 90 "/o, 

 l'iode ne colore ni le glycogène ni l'amidon. Lorsque l'alcool est 

 plus faible, inférieur à 30 «/o, la coloration se produit et, avec d'au- 

 tant plus d'intensité, que l'alcool se trouve à plus faible concen- 

 tration. 



Lorsqu'on a acquis l'habitude, on n'arrive pas seulement à se 

 rendre compte par l'examen microchimique de la présence ou de 

 l'absence du glycogène et de sa localisation dans les diverses ré- 

 gions, mais on peut juger aussi, d'une manière approximative, 

 d'après la nuance que l'iode communique à la préparation, de la 

 plus ou moins grande quantité de glycogène que le tissu renferme. 

 On comprend que, pour cela, il soit nécessaire de faire toujours 

 usage d'une solution d'iode de même concentration. On ne doit 

 pas, comme on le fait souvent, mettre la coupe à examiner dans 

 une petite quantité d'eau sur le porte-objet et ajouter ensuite une 

 goutte du réactif iodé, car ce procédé donne naturellement des 

 concentrations très variées, suivant les proportions d'eau et de 

 réactif mises en présence. 



On évite cet inconvénient en déposant directement le fragment 

 de tissu, sans addition d'eau, dans une goutte de la solution d'iode 

 elle-même. Les solutions que l'on emploie communément dans les 

 laboratoires sont trop concentrées; après quelques essais, je me 

 suis arrêté aux proportions suivantes: 



Kau dist 45 gr., 



lodure de potassium, crist gr., 3 



Iode crist gr. , l 



Ce liquide, qui sera désigné dans la suite sous le nom de « solu- 



