147] ÜEBER D. NERVENENDIGUNGEN D. HAUTSINNESORGANE D. ÄRTHROPODEN. 1] 
Methoden sieht man allerdings auch mit grosser Deutlichkeit die 
Gruppe der Sinneszellen unterhalb der Sinneshaare, man erkennt 
aber meistens nur die Kerne der Sinneszellen und vermisst die Zell- 
contouren, sowie die Abgangsstellen der distalen und proximalen Fort- 
sätze. Meine früheren Resultate verdanke ich hauptsächlich dem Um- 
stande, dass ich von vielen Objekten, welche ich untersuchte, auch Exem- 
plare während und direkt nach der Häutung mir zu verschaffen suchte; 
wässerigen und filtrirten Pikrinsäurelösung, 3cem Eisessig ferner 5gr Platin- 
chlorid (in etwa 5ecm Wasser gelöst) und 2er cryst. Osmiumsäure. Für 
das Studium der Hautsinnesorgane der Arthropoden (und für das der übrigen 
Metazoen noch viel mehr) empfiehlt es sich von dieser Flüssigkeit, welche leicht 
die Nervenfasern zu schwarz färbt, eine bestimmte Menge in ein Schälchen zu 
giessen und etwa die gleiche Menge von wässeriger Pikrinsäure zuzusetzen, 
oder man lässt bei der starken Lösung die Objekte nur für kurze Zeit, die aus- 
probirt werden muss, in der Mischung. Ich habe übrigens auch recht gute 
Resultate erzielt, wenn ich der Mischung nur ler Osmiumsäure zusetzte. Die 
schwache Lösung ist aber für das Studium der Centrosomen und Attractions- 
sphären, zumal bei ruhenden Kernen weniger gut und muss längere Zeit ein- 
wirken. Bei den Sinnesorganen und dem Nervensystem spülte ich dann die 
aus der Mischung herausgenommenen Stücke mit Methylalkohol ab und brachte 
sie dann für längere Zeit in möglichst unreinen Holzessig. Bei grösseren 
Stücken und hartem Chitin liess ich den Holzessig mindestens 24 Stunden ein- 
wirken. Aus dem Holzessig brachte ich die Objekte wieder in Methylalkohol 
oder 70°o Alkohol und dann in 95°/o Alkohol. Eine Färbung ist meist völlig 
überflüssig und tritt der Zusammenhang jeder Sinneszelle mit einer Nervenfaser 
in überraschend deutlicher Weise zu Tage, ebenso ist der Verlauf der distalen 
Fortsätze bis zur Spitze des Sinneshaares mit grosser Schärfe zu erkennen. 
Will man färben, so kann man die Objekte mit gewöhnlichen Kernfärbungs- 
mitteln in toto im Paraffinofen oder aber die Schnitte auf dem Öbjektträger mit 
Hämatoxylin färben. Es ist rathsam, die ungefärbten wie die in toto gefärbten 
Präparate nicht eher aus dem Alkohol in Chloroform oder Xylol zu bringen, 
bis der Alkohol vollkommen klar bleibt, am ersten Tage wird meistens von 
dem Holzessig noch viel Farbe an den Alkohol abgegeben. Wer sich von der 
Leistungsfähigkeit dieser Methode schnell überzeugen will, dem empfehle ich 
die Spinalganglien des Frosches oder die Ganglien des Bauchmarkes von 
Astacus zu untersuchen. Dass beide Methoden keineswegs die Methylenblau- 
färbung oder das Chromsilberverfahren ersetzen können, braucht weiter nicht 
betont zu werden, für Kontrollpräparate sind sie aber besonders geeignet. 
Welche Vorzüge die beiden Mischungen bei anderen Geweben bieten, will ich 
hier nicht weiter diskutiren. 
Beiläufig erinnere ich hier daran, dass meine zweite Mischung eine Kombi- 
nation meiner Pikrinessigosmiumlösung mit der Herwans’schen Flüssigkeit ist. 
Man kann auch die Herwmann’sche Flüssigkeit für das Studium des Nerven- 
systems und der Sinnesorgane verwenden, doch schien mir die kombinirte 
Flüssigkeit bessere Resultate zu liefern, da vermuthlich durch die Pikrinsäure 
die leicht vorkommenden Schrumpfungen vermieden werden. 
