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Katzen und auch bei Hunden, etwas schwieriger schon beim Rinde; 

 sehr schwer ist es aber beim Schaf und Pferd, eine gute Isolation 

 mit gleichzeitiger Fixation der Zellen zu erzielen. Beim Schafe finden 

 sich viele Schleimzellen vor, und die Schleimhautfläche ist stets so 

 reichlich mit Schleim bedeckt, daß das Fixieren dadurch äußerst er- 

 schwert wird ; obgleich das beim Schaf nicht der Fall ist, so kostet 

 es doch auch hier viel Mühe, die erwünschten Resultate zu erzielen; 

 aller Wahrscheinlichkeit nach haben wir es hier mit einer besonders 

 festen Kittsubstanz zu tun. 



Die Zupfpräparate wurden vorzugsweise mit Pikrokarmin auf dem 

 Objektträger gefärbt, zuweilen wurde noch eine Nachfärbung mit ver- 

 dünnter Pikrinsäurelösung vorgenommen, sodann die letztere durch stark 

 verdünnte und mit Ameisensäure etwas angesäuerte Glyzerinlösung 

 ersetzt (1 : 4). Das Ersetzen der Farbe durch Glyzerin erfordert große 

 Vorsicht, weil beim allzu schnellen Eindringen der Glyzerinlösung 

 unter das Deckglas die Zellen und Kerne häufig schrumpfen. Bei der 

 Untersuchung der lebenden Zellen benutzte ich etwas angewärmte 

 LoKOSche Flüssigkeit. Die letztere erhält die Zellelemente so gut, 

 daß bei etlichen Haussäugern (Hund, Pferd) die Flimmerbewegungen 

 einige Stunden noch anhalten; bisweilen dauerte die Flimmerbewegung 

 bei am Schlachthofe erhaltenen Präparaten sogar 24 Stunden. Um 

 Schnitte herzustellen, brachte man Objekte aus verschiedenen Tracheal- 

 teilen auf 48 Stunden in FLEMMiNGSche Flüssigkeit, wusch sie in 

 Wasser im Laufe von 2—5 Tagen aus; hierauf härtete man sie in 

 steigendem Alkohol und bettete sie schließlich in Paraffin ein. 



Da es mir darum zu tun war, recht feine Schnitte zu erhalten, 

 mußte die Einbettung der Objekte in Paraffin sehr sorgfältig geschehen ; 

 nachdem sie, wie gewöhnlich, 24 Stunden in mit Paraffin gesättigtem 

 Xylol verweilt hatten, legte ich sie auf 2 oder sogar auf 3 Tage in 

 auf 55 ° R erwärmtes Paraffin, was deshalb notwendig ist, weil die 

 Trachealschleimhaut in der Regel eine Menge elastischer Fasern ent- 

 hält, die das Eindringen des Paraffins sehr erschweren. 



Angewendet wurden drei Färbungsmethoden: 



1) Eisenhämatoxylin nach Weigert (24 Std.), hierauf konzentrierte 

 Pikrinsäurelösung in absolutem Alkohol, sodann das Einschließen. 



2) Spirituöse Lösung von Safranin nach A. Dogiel, im Thermo- 

 staten bis auf 50° erwärmt (10—20 Min.), darauf zur schnellen Dif- 

 ferenzierung (3—5 Min.) in alkoholische Pikrinsäurelösung; für 1 — 2 Min. 

 in eine 1-proz. Lichtgrünlösung in absolutem Alkohol, sodann das Ent- 

 wässern und Einschließen. Die Zellkerne nur rot, das Protoplasma 

 grünlich, die Schleimzellen dunkelgrün. 



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