110 F. Dorset, 
Fig. 151 u. 152. Schwache Dunkelfärbung der Membran freier 
Infusionspolytomellen bei Behandlung mit lodiodkali und Schwefelsäure 
(Cellulosereaktion). 
Fig. 153. lIodreaktion der Stärke in frischer Cyste. 
Fig. 154 u. 155. lodreaktion der Stärke in zur Cyste sich ab- 
kugelnden Polytomellen aus einer Infusion. 
Fig. 156. Verhalten des Kernes zu Rostellum und Geißelapparat. 
FLEMMING-Fixierung. Eisenhämatoxylin. Wässerige Lösung. 
Fig. 157—160. Volutinreaktion bei aus Cysten gezüchteten stärke- 
losen Hungertieren. Sublimatfixierung. Nachfärbung mit Safranin. 
Tafel7. Polytomella mit ruhendem Kern und allen Phasen 
der Kernteilung. 
Konserviert meist mit SCHAUDINN’s Sublimatlösung, nur Fig. 175, 
176, 177, 179 mit FLEMMING. 
Alle gefärbt mit alkoholischem Eisenhämatoxylin. 
Vergrößerung 2000 : 1. 
Fig. 161. Ruhekern. 
Fig. 162—164. Erste Einleitung der Prophase. 
Fig. 165. Stadium mit fünf Chromosomen. 
Fig. 166. Stadium mit zehn Chromosomen. 
Fig. 167 u. 168. Zerdehnung des Caryosoms. 
Fig. 169—174. Bildung der Spindel aus Caryosomsubstanz. 
Fig. 175 u. 176. Zähflüssige Teile des Caryosoms werden zerdehnt. 
Fig. 177 —182. Zerdehnung und Hantelbildung der Caryosomsubstanz 
in Metaphase, Anaphase und Telophase. o 
Fig. 183—185. Schlußstadien der Kernteilung. 
Tafel 8. Weitere Einzelheiten des Kernbaues 
und der Kernteilung. 
Fixiert mit SCHAUDINN’s Sublimat. Nur Fig. 187, 188, 195, 196, 
198, 210, 211, 212, 214 und 215 mit FLEMMING. 
Alle gefarit mit alkoholischem Eisenhimatoxylin. 
Vergrößerung Fig. 186—189 2000:1, alle übrigen 3000: 1. 
Fig. 186—187. Endstadien der Telophase. 
Fig. 188—189. Rekonstruktion der Tochterkerne. 
Fig. 190. Ruhekern. 
Fig. 191—192. Erste Schritte zur Prophase. 
Fig. 193—194. Zerfall und Quellung des Caryosoms. 
Fig. 195—196. Bildungsstadien der Chromosomen. 
