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Um Actiiiioii in kurzer Zeit im aiis^ostreckteri Zust;iiid zu konservieren eifriiet sich 

 iim l)esteii die von meinem verertlieii Lehrer Herrn Professor T. Tuixhkug ' erfundene 

 Chlormai;nesium- oder Mauiiesiumsulfatmetliode, die ich die zwei letzten ISonimer ffebraucht 

 habe. Sehr schöne (iru])iK'ii von Sagartia undata habe ich unter Anderen damit in nur ein bis 

 zwei Stunden erhalten. Natürlicherweise muss man mit kleinen Mengen des Salzes begin- 

 nen, aber da die Tiere ziemlich schnell darauf reagieren, sind sie; gewöhnlich recht bald 

 für eine neue Dosis empfiinglich. Ich kann daher diese Methode aufs beste empfehlen, 

 weil ich auch fiir histologische Zwecke keine schädlichen Einflüsse von den Magnesiasalzen 

 gesehen habe. 



Wenn man die Chloroform- oder die Magnesiamethode braucht, so inuss man die 

 betäubten Tiere schnell tixieren, weil die Actiniengewebe bekanntlich in kurzer Zeit zer- 

 stört werdeil. Keagentien, die langsam in die Gewebe eindringen, sind daher im Allge- 

 meinen nicht zu empfehlen. Flüssigkeiten, die Osmiumsäure enthalten, sind demzufolge 

 am besten für kleine Stücken, nicht für ganze Tiere passend. Um ganze Tiere dagegen zu 

 tixieren eignen sich Alkohol absolutus oder schwache Chromsäure besser, die recht gute 

 Resultate geben, wenn man die Fixierungsflüssigkeit in den coelenterischen Raum einspritzt. 

 Sehr gut scheint mir auch für solchen Zweck die Perenyi's Flüssigkeit, die auch Mc. 

 MURKICH (1889 a, p. 2) empflehlt. 



Um das Nervensystem näher zu studieren habe ich lebende Tiere mit Metylenblau 

 zu färben versucht. Diese Versuche waren aber vergeblich, weil die Epithelzellen sehr 

 begierig diese Farbe aufnehmen und sie lange Zeit liehalten. Besonders scheinen die 

 Tentakeln gefärbt zu werden. Folgender Versuch kann leiclit die Begierde, womit die 

 Epithelzellen den Farbstoff in sich aufnehmen, anschaulich machen. 



In einer recht schwachen Lösung (etwa 1 : 1000) von Methylenblau liess ich eine 

 weisse Varietät von Metridium diantluis einen Tag stehen, wonach die Lösung bedeutend 

 abgefärbt war. Das schöne, blaugefärbte Tier wurde in ein Aquarium gestellt, wo es etwa 

 1 V2 Monat bis zu meiner Abreise von der zoologischen Station verblieb. Die blaue Farbe 

 war dann zwar bedeutend schwächer, aber doch noch recht stark. 



Einige Versuche mit der Golgi'schen Methode haben ebenfalls keine Resultate 

 ergeben. 



Um Flächenpräparate wie auch isolierte Zellen zu erhalten, bin ich der von den Gebrü- 

 dern Hektwig (1879 p. Ci) gebrauchten Methode gefolgt. Gleiche Teile von 0,2% Essig- 

 säure und 0,04 % Osmiumsäure lässt man in reichlicher Menge fünf oder zehn Minuten auf 

 das Objekt einwirken, das darauf mehrere Stunden in 0,2 % Essigsäure ausgewaschen wird. 

 Die macerierten Teile werden entweder in toto mit Beale'schem Carmin oder auf dem 

 Objectträger mit Pikrocarrain gefärbt. Die Präparate werden in mit der Hälfte Wasser 

 verdünntem Glycerin bewahrt. 



Zur Schnittfärbung habe ich fast ausschliesslich Böhmers Hämatoxylin und Eosin ge- 

 braucht. Diese Dopjjelfärbung giebt, wenn sie gelungen ist, sehr schöne Bilder. Auf diese Weise 

 erhält man einen distincten Unterschied zwischen Bindegewebe und Muskeln, die letzteren 



') T. TULLBERfi, Über Konservierung von Evertebrateu in ausgedehntem Zustand. Biologiska föreningens 

 förliandliiiiiar. Band 4. p. 4. Stockholm 1891. 



