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ZiELER') ist eine bloße May-Grinwaup-Schnittfarbung mit Fließpapiertrock- 
nung des Schnittes und Azetonentwässerung. Das Verfahren von ScHRIDDE?) 
ist eine Azur II-(Eosin)-(GıEmsA-)Schnittfärbung mit Fließpapiertrocknung und 
Azetonentwässerung. Das Verfahren von STERNBERG ®) vollends ist eine Azur II- 
Eosin-(Giemsa)-Schnittfarbung mit Essigsäuredifferenzierung. (Eine ent- 
sprechende May-GrünwaLp-Färbung mit Essigsäuredifferenzierung dürfte wohl 
auch existieren.) STERNBERG färbt 24 Stunden, ScHRıDDE 20 Minuten, ZIELER 
3 Minuten. 
Unsere Färbung differenziert wie STERNBERG, trocknet und entwässert 
z. T. im Prinzip wie ScHRIDDE, bzw. GIEMSA. 
Die ScHrippE-Färbung färbt die Kerne stärker als ZıELER. Bei ZIELER 
treten die oxyphilen Substanzen mehr hervor als bei ScHhriDDE. Bei STERNBERG 
noch mehr als bei ZiELER. Aber bei ZIELER und STERNBERG sind die Kerne 
matt. Unser Verfahren währt eine Stunde. (20 Minuten May-Grinwatp, 
40 Min. Giemsa). Bei unserem Verfahren sind die oxyphilen Substanzen so 
leuchtend wie bei STERNBERG, aber die Kerne noch schärfer und dunkler als 
bei Giemsa. Daran ist Ursache die längere Dauer und intensivere Färbung 
in der Wärme, sowie die kombinierte Zweifachfärbung in zwei verschiedenen 
Farbgemischen. Obwohl der Effekt i. G. zu unserer Pikrinmethode, wo ein 
Romanowsky-Effekt entsteht, im Prinzip auch nur ein blasser Methylenblau- 
Eosineffekt ist, so ist doch diese Kombination für den tatsächlich erreichten 
Erfolg in quantitativer Hinsicht äußerst nützlich. Die Vorfärbung mit dem 
alkoholischen Farbgemisch präpariert gleichsam die Gewebe zur Aufnahme 
des 2. Farbgemisches und von diesem dringen die Farbstoffe aus der wässrig 
glyzerinigen Lösung dann sehr intensiv ein. Es wird hier ein potenzierter 
aufs höchste gesteigerter Methylenblau-Eosineffekt erreicht. 
Die geschilderte Methode eignet sich nun nicht bloß für hämopoetisches 
Gewebe, besonders Lymphknoten, Thymus, Milz sowie für produktiv entzünd- 
liches Granulationsgewebe, in dem Wanderzellen, Leukocyten, Polyblasten usw. 
auftreten, sondern gibt auch ganz besonders schöne Übersichtsbilder bei sonsti- 
gem histologischen Material. Sie ist sehr leicht praktikabel und stets unbe- 
dingt zuverlässig. 
Gerade weil hier basische (karyo-plasmophile) und saure (plasmophile) 
Farbstoffe kombiniert sind, ist die Vielheit der Differenzierung eine viel 
größere als bei der bloßen Hämatoxylin-Eosinfärbung mit (bloß karyophilem) 
Alaunhämatoxylin und plasmophilem Eosin. Es fehlt hier die Basoplasmo- 
ptilie der kernfärbenden Komponente. Der Basophilie der Zellplasmen und 
Zellgranulationen (Mastkörner, Plasmazellen usw.), sowie der verschiedenen 
Neutrophilin ist hier bei Hämatoxylin in keiner Weise darstellerisch genügt. 
Ich glaube, daß meine Methode durchaus geeignet ist, mit der Zeit als 
erste orientierende Übersichtsfärbung in der allgemeinen Histologie an die 
Stelle der Hämatoxylin-Eosinfärbung zu treten — natürlich ohne sie bei ihren 
1) Ztrbl. f. Pathol. XVII, 1906. 
2) Ztrbl. f. Pathol. XVI, 1905. 
3) Ztrbl. f. Pathol. XVI, 1905. 
