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einige Versuche feststellen. Nach dem Auswaschen werden die Präi^a- 

 rate dann in der gewöhnlichen Weise in Canadabalsam übertragen. 

 Diese Methode liefert sowohl bei Mikrotom- als auch Freihandschnitten 

 eine sehr gute Färbung der Zellkernkristalloide. Dieselben sind, 

 wenn die Zeit des Auswaschens einigermaßen richtig getroffen ist, 

 noch intensiv gefärbt, wenn das Kerngerüst und auch die Nukleolen 

 schon vollständig ausgewaschen sind. 



Die Do23pelf ärbung mit Häma- 

 toxylin und Säurefuchsin führt man 

 zweckmäßig in der Weise aus, daß man die 

 betreffenden Objekte vor dem Einbetten in 

 Paraffin mit Delafield scheni Hämatoxylin 

 durchfärbt und erst die aus denselben ange- 

 fertigten Mikrotomschnitte in der oben be- 

 schriebenen Weise mit Säurefuchsin nachfärbt. 

 Es erscheinen dann an gut gelungenen Prä- 

 j^araten Kerngerüst und Nukleolen violett, 

 die Kristalloide aber rot." P. Mayer scher ^'S- 95. 



Hämalaun (vgl. p. 1 9) darf hierzu nicht benutzt Proteinkristalloide 



werden, da er bei der Fixierung mit Subli- i™ ?f"^^^K^^ von Amorpho- 



, ' T T^ ■• . X" T j. T-i 1 1 • Phallus Kivien. Bei a und b 



mat nur das Kerngerust färbt. Durch diese ^^^ Vakuolenhaut teilweise 



und andere Tinktionsmethoden ist es ZiMaiER- abgehoben. Vergr. 440. 

 MANN gelungen, zu zeigen, daß Zellkerneiweiß- 

 kristalle viel weiter verbreitet sind, als man geglaubt hat (Fig. 94). Sie 

 wurden bisher nach einer von Zimivieemann (III, 46) herrührenden und durch 

 mich ergänzten Zusammenstellung bei folgenden Pflanzen konstatiert: 



Lineae, Linum austriacum (Zimmermann II, 126). 



Halorageae, Hippuris vulgaris (Zimiviermann, II, 126). 



Candolleaceae, Candollea adnata (Hatjnkjär I). 



Campanulaceae, CamjDanula und Phyteuma spec. (Vogl I; 

 Schenk I, 24, Anm.; Zimmermann II, 71 und 127). 



Ericaceae, Pirola spec. (Raunkjär I). 



Oleaceae, Fraxinus (Schaar I), bei 8 von 9 untersuchten Arten 

 (Zimäiermann II, 128). 



Gentianeae, Menyanthes und Limnanthemum (Zimmermann II, 129). 



Convolvulaceae, Convolvulus sp. (Borzi I). 



Scrophulariaceae, Lathraea (Radlkoeer I), bei 21 von 25 

 untersuchten Arten (Zimmermann II, 130), Alectoroloj)hus (Sperlich I). 



Lentibulariaceae, Pinguicula (Klein I), Utricularia (Russow I). 



Gesneraceae, Aeschynanthus (Raunkjär I), Gloxinia (Zimmer- 

 mann II, 136). 



Papilionaceae, Astragalus glycyphyllos (Mrazek I, 22). 



Bignoniaceae, Bignonia, Catalpa, Tecoma (Zimmermann II, 137). 



Verbenaceae, Clerodendron, Verbena (Zimmermann II, 137). 



Phytolaccaceae, Ledenbergia, Rivina (Zimmermann II, 137). 



Urticaceae, Urtica (Kallen I). 



Liliaceae, Galtonia (Leitgeg I, 113); Scilla (Huie I). 



Pteridophyten 16 Arten der Polypodiaceen, ferner Cera- 

 topteris und Aneimia (Zimmermann II). 



Musaceae, Musa (Molisch I, 177). 



Amaryllideae, Nerine curvifolia Herb (Molisch II, 92). 



