38 18% (6, fin hs 
säure, Phosphormolybdänsäure, H>2 O> ergaben brauchbare Bilder. 
Doch waren diese nicht mehr ganz so rein, da auch eine leichte 
Färbung des Protoplasmas, der Hornsubstanz, des Kollagens und 
selbst hier und da des Fettes konkurrierte. Noch weniger 
brauchbar erwiesen sich die Chloride von Gold, Eisen und Queck- 
silber und ganz ungeeignet die alkalischen Oxydationsmittel: 
Natriumperborat und Ferrieyankali, da hier die Kernfärbung einer 
Protoplasmafärbung Platz machte. Ich möchte somit, falls eine 
nachträgliche Verstärkung und Fixation des Sauerstoffbildes er- 
wünscht ist, hierzu nur Chromsäure und Ammoniumpersulfat 
empfehlen. 
VII. Die beste Methode zum Nachweis der 
Sauerstofforte. 
Am besten untersucht man natürlich die Gewebe so frisch 
wie möglich. Man exzidiert vom lebenden Tiere oder Menschen 
oder benutzt frisches Leichenmaterial (nicht älter als 24 bis 
48 Stunden). Die Resultate sind nicht wesentlich verschieden. 
In allen Fällen bringt man die Organstücke sofort unter die 
Wasserleitung, spült das Blut unter Auspressen ab und legt sie 
auf einige Zeit in destilliertes Wasser, um das (Gefrieren zu 
erleichtern. 
In gewöhnlichem (kalkhaltigem) Leitungswasser dürfen die 
zu untersuchenden (rewebe nicht längere Zeit verweilen, sondern 
höchstens in destilliertem Wasser. 
Die Gewebe werden am besten mit Kohlensäureschnee ver- 
eist, geschnitten und sofort in destilliertes Wasser gebracht. Von 
hier aus kommen sie in eine der beiden folgenden Lösungen: 
Lösung A: 
Methylenblane mern, =. 1.202 
Kongsaht rem N re 
Salzsaure (O5llo)ur. 2. 4 Tropfen 
Wasseri e. DO 
Die Mischung wird bis zur Entfärbung erwärmt. Trübt sie 
sich beim Erkalten, so wird sie filtriert. 
Lösung B: 
Der Lösung A wird tropfenweise Natronlauge (1°/o) zugesetzt, 
bis eine bleibende Fällung entsteht. Darauf wird filtriert. 
