VERJUNGUNGSBEDINGUNGEN DER NORRLÄNDISCHEN KIEFERNHEIDEN. CLXI 
sich von dem sonstigen Boden innerhalb des Feldes unterscheidet. Ich habe 
diese Frage teils durch bakteriologische Untersuchungen, teils auch durch 
direkte chemische Analysen klarzustellen versucht. 
Direkte bakteriologische Untersuchungen liefern indessen keine sonderlich 
ausgiebige Antwort auf die Frage, weshalb A-Pflanzen sich auf gewissen Plät- 
zen entwickeln. Bodenproben von der Parzelle, wo die Saatgruben mit der 
von der Heide zusammengescharrten Humusdecke gedängt worden sind, zeigen 
in einer Peptonlösung ein sehr geringes Ammoniakabspaltungsvermögen (siehe 
Tab. 9, Proben 15—20). Die Proben stammen aus zwei Saatgruben mit 
A-Pflanzen, zwei mit B-Pflanzen und zwei mit C-Pflanzen her. Der Unterschied 
zwischen den Bodenproben aus diesen Gruben ist sehr unbedeutend, im Durch- 
schnitt zeigen die Gruben mit B-Pflänzen den höchsten Wert, danach kommen 
die mit A-Pflanzen und zuletzt die mit C-Pflanzen. Die Unterschiede sind 
jedoch so unbedeutend, dass ihnen keine Bedeutung beizumessen ist. Sie 
liegen sicherlich weit innerhalb der Grenzen der unvermeidlichen Versuchs- 
fehler. Die Bodenproben aus den Saatgruben in Parzelle 2 zeigen ein ziemlich 
hohes Ammoniakabspaltungsvermögen, die Gruben in dieser Parzelle wurden 
auch mit sechs Liter gehacktem Torf gedängt. Die Saatgrube mit C-Pflanzen 
zeigt indessen ein grösseres Ammoniakabspaltungsvermögen als die mit A-Pflan- 
zen. In dem Ammoniakabspaltungsvermögen der Bodenproben kann man dem- 
nach in diesem Falle nicht den Anlass zu der verschiedenartigen Entwicklung 
der Pflanzen sehen. Sämtliche Bodenproben ermangeln des Vermögens, BuH- 
LERT-FICKENDEY'S Lösung zu nitrifizieren, eine Salpeterbildung ist nicht zu 
beobachten, ob man nun die Lösung mit Bodenproben aus Saatgruben mit 
guten oder mit schlechten Pflanzen infiziert (Tab. 10). 
Untersucht man jedoch das Vermögen der Bodenproben, bei Lagerung Sal- 
peter zu bilden, so kommt man ohne Zweifel der wirklichen Erklärung näher. 
Im Sommer 1915 wurden drei Bodenproben von dem Boden neben den ver- 
modernden umgestiärzten Baumstämmen auf dem Versuchsfelde genommen. 
Zwei von den Proben hatten zu Ende der Lagerungszeit (acht Wochen) einen 
nicht unbedeutenden Gehalt an Salpeterstickstoff, nämlich 4,o und 1,2 mg pro 
kgiBodeni(ab:412, Nr: 25 und 26) Der, erste ist ein, Wert;udenmanjbis- 
weilen auch bei solchem Boden findet, auf dem die Pflanzen schwach nitrat- 
haltig sind (siehe Tab. 7, Nr. 47 .bei HESSELMAN 1917 a). Die dritte Probe 
zeigt eine unbedeutende Salpeterbildung, die innerhalb der Versuchsfehler 
liegt. Diese Versuche ermutigten zu weiteren Studien im Sommer 1916. Bo- 
denproben zur Lagerung wurden nun aus sechs Saatgruben mit A-Pflanzen, 
fänf mit B-Pflanzen und sieben mit C-Pflanzen genommen. In jeder Gruppe 
waren verschiedene Parzellen vertreten. Von den sechs Proben aus Saat- 
gruben mit A-Pflanzen lieferten:fänf positives Resultat (siehe Tab. 
12, Nr. 7—211). In vier von den: Proben werden bei Lagerung be- 
trächtliche und in zwei von diesen bedeutende Mengen Salpeter- 
stickstoff gebildet, in der finften ist der Gehalt an Salpeterstick- 
stoff unbedeutend und liegt innerhalb der Versuchsfehler. Von den 
Erobensrats: Saatgruben mit BiPflangen. liefertveime Probeeinrgmn- 
sicheres Resultat, die äbrigen ein rein negatives (siehe Tab. 12, Nr. 
14—16). Eine von den Proben hatte jedoch anfangs einen unsiche- 
ren Nitratgehalt, der währernd des! Lagerns verschwand. Die7sie- 
ben: Probe aus, Saatgrubeni mit; C-Pflanzen lefern sämtitehesxein 
XI.  Meddel. från Statens Skogsförsöksanstalt. 
