über die Zellformen des lockeren Bindegewebes. 685 



peratiir geschehen kann. Die gefärbten zelligen Elemente halten sich ziemlich 

 lange in gutem Zustande und verändern sich sehr langsam, sodass man 

 bequem Zeichnungen anfertigen kann. Die beschriebene Nr-Färbung ist also 

 eigentlich eine Kombination von intra- und supravitaler Färbung. 



Um brauchbare fixierte Präparate des lockeren intermuskulären Binde- 

 gewebes herzustellen, ist es natürlich unmöglich, einfach ausgeschnittene 

 Stücke davon in gewöhnlicher Weise zu bearbeiten. Es kommt viel darauf 

 an, die topographischen Beziehungen der Zellen zu einander nicht zu ver- 

 ändern, um sie dann auch im Präparat in der richtigen Lage zu haben. 

 Man muss also danach trachten, die dünne Schicht intermuskulären Gewebes 

 in situ zu fixieren und auch der Fläche parallel zu schneiden, denn fast alle 

 Zellen stellen vornehmlich platte, in einer Ebene liegende Gebilde vor. 



Diese Bedingungen werden auf folgende Weise erfüllt. Die Haare 

 an der Bauchwand werden rasiert, die Bauchwand geöffnet, es wird in die 

 Bauchhöhle ein kleines, quadratisches (von 1 — 2 cm die Seite), mit einer 

 Öffnung in der Mitte versehenes Korkstückchen eingeführt und dann fixiert 

 man den beliebigen Abschnitt der Bauchwand in ihrer ganzen Dicke mittelst 

 Igelnadeln resp. (für Alkohol) gewöhnlicher Stecknadeln am Korkstück. 

 Wenn dies geschehen ist, schneidet man das aufgespannte Stück heraus und 

 fixiert es. In 90°;o Alkohol werden die Nadeln und der Kork entfernt und 

 die durchstochenen Ränder des Stückes abgeschnitten. Man bekommt auf 

 diese Weise regelmässige quadratische Stücke, die die Dicke der Bauchwand 

 haben und nach Celloidineinbettung der Oberfläche parallel geschnitten werden. 

 Selbstverständlich ist dieses Verfahren bei grossen Tieren, Hunden, Katzen 

 u. dergl. deswegen ungünstig, weil hier die Bauchwand viel zu dick ist. 

 Hier fixiert man in der beschriebenen Weise im ausgespannten Zustande 

 nicht die ganze Dicke der Bauchwand, sondern nur zwei abpräparierte Muskel- 

 schichten mit der dünnen Bindegewebschicht dazwischen. 



Zur Untersuchung der dünnen Membranen, Mesenterium und Netz, 

 gebrauchte ich die von mir schon früher (25, S. 21) beschriebene Methode, 

 die in dem Ausspannen der Membranen über der Öffnung abgeschnittener 

 Eeagensglashälser besteht. 



Die verschiedenen anderen Organe wurden zur Untersuchung ihres 

 Bindegewebes in gewöhnlicher Weise fixiert. 



Zum Studium der blutbildenden Organe fertigte ich aber, und zwar 

 hauptsächlich, auch Deckglaspräparate an. Trockene Präparate kamen aber 

 selten zur Anwendung. Zum Studium der Zellstrukturen und speziell auch 

 der Zellgranula leistet meiner Meinung nach diejenige Deckglasmethode viel 

 besseres, welche in der neueren Zeit hauptsächlich von Jolly(19) empfohlen 

 worden ist. Sie besteht darin, dass man eine dünne Schicht frischen Gewebes, 

 sei es nun Blut oder Knochenmark, auf das Deckglas bringt und dann sofort 

 in die Fixierungsflüssigkeit eintaucht. Die Deckgläschen mit der fixierten 

 Gewebsscliicht an der einen Seite werden dann wie gewöhnliche Präparate 

 und wie Schnitte weiter behandelt und gefärbt. Das Beschicken des Deck- 

 glases mit dem frischen Gewebe muss möglichst schonend geschehen — für 

 Flüssigkeiten, wie Blut oder Peritonealflüssigkeit in derselben Weise wie bei 



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