686 Alexander ]\I a x i m o w : 



Anfertigung eines gewöhnlichen trockenen Blutpräparates, für Gewebe wie 

 Knochenmark. Milz etc. in der Weise, dass man mit der frischen Schnitt- 

 fläche eines kleinen Gewebsstückchens die Deckglasoberfläche au mehreren 

 Stellen sanft berührt, wobei am Glase stets massenhaft Zellen haften bleiben ; 

 sie sind hier alle ganz intakt und schön flach ausgebreitet. 



Als Fixierungsriüssigkeiten benutzte ich. ebenso wie in meinen früheren 

 Arbeiten, absoluten Alkohol (A) und warme Zenker sehe Flüssigkeit [Z\ 

 ferner kam auch die vor kurzem von Helly (13,14) empfohlene Mischung 

 in Amvendung — Zenker sehe Flüssigkeit, in welcher die Essigsäure durch 

 käufliches Formol ersetzt ist, Zenker-Formol (ZFi. Ebenso, wie zur echten 

 Z. -Flüssigkeit der Eisessig, so wird auch hier das Formol unmittelbar vor 

 dem Gebrauch hinzugesetzt. Ich kann die Angaben Helly s durchaus be- 

 stätigen, dass die Z. F. Fixierung vor allem die Granulationen, z. B. die 

 eosinophilen und amphophilen, z. T. auch die Mastzellenkörnchen ganz 

 vorzüglich konserviert. Dünne Membranen und Deckglaspräparate fixierte 

 ich 20 — 30 Minuten mit ZF. Gewebsstücke vier Stunden und behandelte sie 

 weiter nach II eil y. Die letzteren wurden in Paraffin eingebettet, ausser 

 den Bauchwandpräparaten, die sich in Paraffin nicht gut schneiden lassen 

 und deswegen in Celloidin eingebettet werden mussten. Alle sonstigen zum 

 Schneiden bestimmten, mit A. und Z. fixierten Präparate wurden stets in 

 Celloidin eingebettet. Für das Studium des lockeren Bindegewebes in der 

 Bauchwand sind zu dünne Schnitte ungünstig — sie müssen etAva 7,5 u 

 betragen. 



Während des Niederschreibens meines Manuskriptes erschien die Mit- 

 teilung von Do mini ci (8) über seine neue Methode (Jod -|- Sublimat -|- 

 Formol, JSF) zur Untersuchung von Bindegewebe. Nachprüfungen, die ich 

 sofort unternahm, bestätigten, dass seine Fixierung in der Tat zum Studium 

 der Zellformen im Bindegewebe, vor allem der ruhenden Wanderzellen, vor- 

 züglich geeignet ist. Doch ermöglicht sie kaum mehr zu sehen, als die 

 anderen von mir gebrauchten Methoden, z. B. richtig angewandte Z. -Fixierung; 

 die Centrosomen in den Zellen treten nach JSF viel schlechter hervor, die 

 Mastzellenkörner bleiben löslich, sodass sie nach der Färbung von metachro- 

 matischen Höfen umgeben erscheinen und im Protoplasma der ruhenden 

 Wanderzellen tritt oft starke, z. T. wohl sicher künstliche Vacuolisierung ein. 

 Jedenfalls ist Domini ci im Unrecht, wenn er behauptet, dass meine Me- 

 thoden zur Erforschung der Verwandlungen der Polyblasten ungeeignet sind. 



Von Färl)ungen benutzte ich auch jetzt meine früheren Methoden, 

 also polychromes Methylenblau nach Unna (Mbl.j, Eisenhämatoxylin nach 

 Heidenhain (Eh.), eventuell mit van- Giesonscher Nachfärbung (EhvG.), 

 letztere beide nur nach Z.-Fixierung und ferner auch meine (25, S. 19—20) 

 Hämatoxylin- Fuchsin S.-Aurantia Färbung (H.F.A.). 



Zum Studium der Mastzellen und vor allem zum un1)ediiigt sicheren 

 Nachweis derselben ist es, wie ich schon früher i27i hervorgelioben habe, 

 unbedingt notwendig, auf das sorgfältigste jede Berührung des Präparats 

 mit Wasser oder wässerigen Lösungen zu vermeiden. Celloidinschnitte von 

 A.- Präparaten oder mit A. fixierte Deckglaspräparate resp. Membranen müssen 



