Übersicht nach dem Stoif. 1033 



Honservieren und Fixieren: Bruntz (1) p. 232 Exkretionsorgane. — Gross (I) 

 p. 79 Ovarium. — Osborn (4) p. 35—36 Cocciden. — Peal ($) p. 62—64 

 Aleurodidae. 



Präparieren : Bruntz (I) p. 239 Exkretionsorgane. — Gross (I) p. 78 — 80 Ovarium. 



— iWeek (I) p. 259 — 260 Mundteile. — Osborn (4) Getrocknete Cocciden. 



— Peal (3) p. 62—64 Aleurodidae. — Porta (1) p. 102 DrüsenfoUikeln. — 

 Sedlaczek (I) p. 148 Adelges piceae Ratzeburg. 



Färben: Bruntz (1) p. 232 Exkretionsorgane. — Gross (1) p. 79 Ovarium. — 

 Meek (I) p. 260 Mundteile. — Porta (I) p. 101—102 DrüsenfoUikeln. 



Slikroskopisclie Untersuchung: Bruntz (1) Nephrocyten. — Godd (I) Darmkanal 

 von Philaenus spumarius. — Gross (I) Ovarium. — Meek (1) Mundteile. 



— Porta (1) DrüsenfoUikeln und Darm. — Hohler (1) Chorion von Pyrrho- 

 coris apterus. 



Spektroskopisehe Untersuchung: Cholodkovsky (1) p. 8 Grüne Fcärbung des 

 Alkohols durch Pachypappa vesicalis Koch, = Chorophyll. 



Untersuchung der Drüsensekretion: Porta (I) DarmfolUkeln. 



Beweis für erfolgten Tod: Faes (1) Cocciden. 



Studium des Flugs: Lendenfeld (1) Momentaufnahme. 



Studium der Variabilität: Warren (I) Hyalopterus trirhodus Walker. 



Aufziehen lebender Tiere: Bueeo (I) Pelocoris femorata PaUsot. — Cholod- 

 kovsky (2) Adelges-Aiten. — Fahre (I) Pentatomiden, Reduvius personatus, 

 Pemphigiis- Alten des Terpentinbaums. ■ — Morrill (I) Aleyrodes Packardi 

 Morrill. — Newstead (3) Cocciden. — Niceville (1) p. 164 — 165 Dyctyophora 

 pallida Donovan. — Nüsslin (I), (3) Adelges piceae Ratzeburg. — Perkins (I) 

 Perkinsiella saccharicida Kirkaldy. — Pierre (ä) Elasmostethuß griseus Geer. 



— Stcbbing (3) Adelges abietis. — Xambeu (1) Rhinocoris iracundus Porta. 



— Zimmermann (1) p. 368 — 369 Antestia variegata. 



Gegen losektea-Fraß in entomol. Sammlungen: Jacobi M. (I) empfehlt CCI4. 



Bekämpfung von Pflanzen- Schädlingen : Alwood (1) p. 41 Cocciden. — Berlese (I) 

 Bedeutung der natürl. Feinde. — von Binnenthal (1) p. 313 — 352 Rosen- 

 Schädlinge; Ortliotylus nassatus, Aphiden, Cocciden. — • Blachas (1) p. 108 

 Lecanium oleae Bern. — Britton (I) p. 38 Cocciden; — (3) San Jose 

 Laus u. Aleyrodes vaporariorum. — Burgess (1) p. 26 Aphiden; 

 p. 41 — 42 Cocciden. — Caudell (I) p. 45 Cocciden. — Chittenden (i) 

 Zuckerrohr- Schädlinge: p. 52 — 54 Lygus pratensis L., p. 54 — 55 Nysius 

 angustatus Uhler, p. 55 N. minutus Uhler, p. 55 — 56 Halticus Uhleri Girard, 

 p. 57 Empoasca tnali L. B. u. Emp. flavescens Fav., p. 58 — 61 Aphis gossypii 

 Glover, p. 61 — 62 Pemphigus hetae Doane, p. 62 Tychea hrevicornis Hart. 



— Coole mau (i) p. 80 Kalifornische Coniferen-Cocciden. — Faes(I) empfiehlt 

 HCN. — Feit (1) p. 507 Adelges pinicorticis Fitch; p. 511 Chionaspis pini- 

 foliae Fitch; — (2) p. 761—775 San Jose Laus. — Fisher (J) p. 17 Psylla 

 pyricola, p. 18 White Rose-scale, p. 18 — 22 Aspidiotus perniciosus 

 Comstock. — Forbes (1) p. 147 Aspidiotus perniciosus, p. 150 Murgantia 

 histrionica. — Froggatt (2) Myzoxylus laniger. — Garralda (1) Phylloxera 

 vastatrix. — Gossard (I) Aleyrodes citri. — Harris (1) p. 45 Cocciden. — 

 Hunter (I) Amerik. Aphiden. — Kotinsky (3) p. 30 Bedeutung der Cocci- 

 nelliden. — Lefroy (1) Pulvinaria psidii Mask., Lecanium imbricans Green, 

 formicarii Green, expansum Green, hemisphaericum Tozzetti, viride Green, 



