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berücksichtigt ca. 40 Hühner aus. Diese zeigten zum Teil Follikel in Rück- 
bildung, oder waren doch verdächtig, zum Teil lieferten die damit angestellten 
Fixierungsversuche keine befriedigenden Resultate. Die jüngsten Stadien von 
bis zu drei Monate alten Hühnern verschaffte ich mir durch eigenen Brüt- 
versuch, zu deren Ergänzung ich noch einige mit ziemlich sicherer Geburts- 
angabe gekaufte Küken benutzte. Die sämtlichen älteren Hühner bekam 
ich in grosser Zahl bei Ankunft der russischen Geflügeltransporte hier in 
Berlin. Unter den Opfern des Transports fanden sich fast immer mehrere 
noch lebendwarme tote Tiere. Die Geschlechtsorgane wurden — bei Hühnern 
mit grossen Follikeln immer in situ an dem betreffenden Stücke der Wirbel- 
säule hängend — in reichlicher Fixierungsflüssigkeit fixiert. 
Die besten Präparate erhielt ich bei Ovarien jüngerer Tiere durch 
Fixierung mit Sublimat-Eisessig. Diese war für grosse Follikel nicht be- 
sonders geeignet, da der Dotter weich blieb und leicht eine Loslösung des 
Keimbläschens aus seiner Lage eintrat. Für Ovarien mit grossen Follikeln 
bildete eine Lösung von Calcium Bichromicum 2°, Sublimat 2°/o und Eis- 
essig (20:10:1) die beste Fixierungsmethode, die auch für kleine Ovarien 
brauchbare Resultate ergab. Den stärkeren Sublimatzusatz ziehe ich der 
einfachen Burchardtschen Flüssigkeit vor. Nachbehandlung mit Jod ist 
bei dieser Fixierungsflüssigkeit notwendig. 
Die fixierten Organe wurden entsprechend weiter behandelt Die Über- 
führung durch die Alkoholreihe wurde ganz allmählich vorgenommen bis zum 
80° igen Alkohol; in 96 °/, kamen die betreffenden Stückchen erst unmittelbar 
vor der Einbettung auf höchstens 12 Stunden. Es wurde fast ausschliesslich 
in Paraffın eingebettet, nur einige Präparate in Celloidin. Die Paraffın- 
einbettung geschah anfangs durch absoluten Alkohol, später durch Aceton. 
Das Aceton wurde vorher in der Wärme durch Cuprum sulfuric. wasserfrei 
gemacht. Für die Einbettung ergaben sich folgende Zeiten als die günstigsten. 
Die Organstückchen von etwa '/s cm Dicke, aber in dem ganzen Organ resp. 
den Follikeln entsprechender Grösse (mit Ausnahme der Follikel über 11 mm 
Grösse), blieben in Aceton bei Bluttemperatur !/ı bis 1 Stunde, in Chloroform 
oder Xylol 10 Minuten bis !; Stunde, in einem Gemisch mit Paraffin 
!/ı Stunde, in dreimal gewechseltem Paraffin !/2 bis 3 Stunden. Eingebettet 
wurde in ganz festem Paraffin mit einem Schmelzpunkte von 56—58° C. 
oder in einem aus ungefähr gleichen Teilen bestehenden Gemisch dieser 
Paraffinsorte mit der weicheren. 
Von den in der beschriebenen Weise eingebetteten Stücken wurden 
ausschliesslich Schnittserien zuletzt als Bandserien angefertigt. Die Schnitt- 
dicke betrug bei den jüngsten Ovarien 2 bis 3 uw, bei grösseren 5 bis 7 u; 
die über etwa 3 mm grossen Follikel resp. deren Kerne wurden 10 « dick 
geschnitten. Sämtliche Schnitte wurden auf Objektträgern durchschnittlich 
zu 5 bis 6 aufgeklebt. Die Schnitte kleinerer Ovarien und der kleineren 
Follikel wurden auf erwärmtes Wasser gebracht und hieraus aufgefangen. 
Diese Methode war jedoch für die grossen Follikel von etwa 5 mm an 
unsicher. Hier leistete mir mit einer kleinen Modifikation die Aufklebe- 
methode mit Phenolgelatine (nach Olt) gute Dienste. Das von Olt angegebene 
