314 Alfred Trautmann: 
Die eingebetteten Hypophysen bezw. Hypophysenstücke wurden teils 
in Einzelschnitte (2—6 u), teils in Serien ($—10 .-) mit dem Henneberg- 
schen Kettenmikrotom zerlegt. Von jeder Tierart fertigte ich eine voll- 
ständige Serie der Hypophyse in sagittaler, segmentaler und horizontaler 
Richtung an. Es ist schwer zu sagen, welcher Richtung als der günstigsten, 
d.h. die grösste Übersicht bietenden, der Vorzug zu geben ist, da jede eben 
einen gewissen Vorteil, je nachdem was man zu untersuchen gewillt ist, 
bietet. Vielleicht gestattet der etwas ventral von der Mitte geführte hori- 
zontale Schnitt die beste und ausgedehnteste Übersicht über alle Bestandteile 
der Hypophyse. 
Die Paraffinschnitte wurden mit Eiweissglyzerin, die Oelloidinschnitte, 
falls es sich um Serien handelte, nach der Oltschen Methode, die sich jedoch 
nach meinen Untersuchungen infolge zu starken Mitfärbens der Gelatine 
weniger gut bewährte, auf den Objektträger befestigt. Mit dem Gefrier- 
mikrotom arbeitete ich, wenn es darauf ankam, fettlösende Substanzen zu 
umgehen. 
Die entparaffinisierten Schnitte wurden den verschiedensten Färbungen 
unterworfen. Um die verschiedenen Zellelemente im Darmteil der Hypo- 
physe drastisch zu Gesicht zu bringen, haben sich vornehmlich nach meinen 
Befunden folgende Doppelfärbungen recht gut bewährt: Hämatoxylin bezw. 
Hämalaun-Eosin bezw. Kongorot oder Säurefuchsinpikrinsäure, Safranin- 
Lichtgrün nach Fixierung nach Flemming; auch Färbungen mit Parakarmin 
bezw. Boraxkarmin-Pikrinsäure, Karmalaunindigokarmin, Magentarot-Pikrin- 
säure-Indigokarmin nach Ramön y Cajal (namentlich bei Fixierung nach 
Zenker), Triacidgemisch geben gute Bilder. 
Hervorragendes leistete auch bezüglich der Fixation wie Färbung der 
Gewebsteile in der Hypophyse die mir von Herrn Professor Dr. Held gütigst 
genannte Methode, die ich allerdings nur bei kleinen Tieren gebrauchte: 
1. Fixation durch Injektion von Müllerscher Flüssigkeit, der 0,5% o 
Formol, 3’o Essigsäure, 3°/o Sublimat zugesetzt wird, nach vor- 
heriger Ausspülung der Gefässe mit Ringerscher Lösung, der man 
Amylumnitrit beifügt. 
Härtung in Alkohol von steigender Konzentration (Jod) und Ein- 
bettung durch die trockene Celloidinmethode. 
3. Schnitte (5 „) beizen mit 5°/o Eisenalaun 5‘, worauf man mit 
Ag. dest. (öfters wechseln) gut abspült. 
4. Schnitte in eine Hämatoxylinlösung bei 50° 12—-24 Stunden. (Einige 
Tropfen von einem vier Wochen lang gereiften Gemisch [Häma- 
toxylin 1,0, 70°o Alkohol 100,0, Molybdänsäure den Boden des 
Gefässes bedeckend] in Aq. dest.) 
5. Differenzierung mit Eisenalaun. 
189) 
6. Abspülen, Entwässern, Einschliessen. 
Sehr gute Resultate gab auch die Färbung durch Eisenalaun-Hämatoxylin 
nach Heidenhain mit Nachfärbung von Erythrosin oder Säurefuchsin- 
pikrinsäure. Letztere diente mir auch zum Nachweis des Bindegewebes 
in der Hypophyse. 
