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Die Beziehungen der Myofibrillen zu den Sehnenfibrillen. 
Prof. M. Heidenhain, der mich in sein ausgezeichnetes mikro- 
technisches Verfahren einweihte, meinen ergebenen Dank zu sagen. 
Material und Technik der Untersuchungen. 
Meine Untersuchungen machte ich an Amphibienlarven (Salamandra 
atr., mac., Triton) und an Muskeln von Fröschen und Mäusen (palmare und 
plantare Muskeln, M. gastrocnemius). Die Amphibienlarven fixierte ich im 
sanzen und bettete dieselben entweder im ganzen ein, oder benutzte nur 
das Schweifende (3 « dicke Serien sind fast unmöglich aus der ganzen Larve 
zu gewinnen). Zu ihrer Fixierung verwandte ich 1,5°o Trichloressigsäure und 
Sublimattrichloressigsäure („Subtrie“ M. Heidenhains.') Einen Teil der 
Tritonlarven erhielt ich bereits fixiert und in toto mit Boraxkarmin tingiert. 
Die Muskeln von Frosch und Maus untersuchte ich in dreifacher Weise: 
1. in frischem Zustande, 2. an isolierten und gefärbten Präparaten, 3. an 
fixiertem und eingebettetem Material. Zur Isolierung brachte ich zweierlei 
Verfahren in Anwendung: 
1. Der Angabe Schultzes gemäss habe ich kleine Muskel-Sehnen- 
stücke in Formol- Alkohol (1 Teil Formol — 2 Teile absol. Alkohol) durch 
24 Stunden fixiert, nachher mit Chromhämatoxylin gefärbt (nach Schultze), 
später die Färbung in mehrfach gewechseltem 70°0 Alkohol differenziert. 
Hierauf kam das Material in 1° Fuchsin S (Rubin) durch 24 Stunden zu 
liegen und nachher wurde es in 96°o und absoluten Alkohol gebracht und in 
Xylol eingelegt.?) Die Muskelfasern habe ich in Xylol unter mikroskopischer 
Kontrolle isoliert. 
In Xylol können wir ebenso bequem und mit Erfolg die Isolierung 
durchführen, wie in 70°/o Alkohol oder im Gemisch von essigsaurem Kali, 
destilliertem Wasser und Methylalkohol, überdies haben wir den grossen Vor- 
teil, dass wir das so vorbehandelte Präparat in Kanadabalsam einschliessen 
können. 
2. Im Sinne v. Frorieps habe ich in 2,5 °0 salieylsaurem Alkohol 
isoliert. Die Muskeln verblieben zwei bis vier Wochen in der isolierenden 
Flüssigkeit, nachher durch 24 Stunden in Leitungswasser, alsbald in ein bis 
zwei Stunden aufgekochtem Wasser und schliesslich wurden die so behandelten 
Fasern in 10°/o Alkohol eingelegt. Zur Färbung benutzte ich diluierte 
Lösungen von Hämatein und Fuchsin S. Die im Groben zerfaserten Fasern 
legte ich auf je 24 Stunden in den Farbstoff ein. nach der Färbung hingegen 
brachte ich sie nach einer Alkoholserie in Xylol; die Isolierung nahm ich in 
Xylol vor und schloss die Präparate in Kanadabalsam ein. 
Die Behandlung des fixierten und eingebetteten Materials geschah in 
folgender Weise: 
a) Zu jeder Untersuchung wählte ich paarige Muskeln (von der 
Extremität der rechten und linken Seite), so dass ich den einen Muskel z. B. 
!, „Subtrie* enthält 9 gr Sublimat, 2 gr Trichloressigsäure, 1 cem 
Eisessig in 100 cem physiol. Kochsalzlösung. 
2) Die genaue Beschreibung der Behandlungsmethode siehe im Archiv 
f. mikroskop. Anatomie, Bd. 79, S. 319. 
