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oión están muchas horas, lo mejor veinticuatro. Luego se lavan en agua 

 corriente hasta decolorarlos de suerte que aparezcan sólo los cristaloi- 

 des. Este lavado dura de algunos minutos hasta muchas horas, según el 

 material. 



Nosotros hemos procedido así : 



1.** Hemos fijado el material unas veces en la solución alcohólica de 

 sublimado corrosivo, como Zimmermann; otras, en una mezcla de par- 

 tes iguales de alcohol absoluto y de una solución acuosa saturada de su- 

 blimado corrosivo, y otras, en la mezcla de Schaudin para protozoos, 

 que consta de dos partes de una solución acuosa de sublimado corrosivo 

 (7 gramos en 100 de agua caliente) y una parte de alcohol absoluto (1). 

 Todos estos líquidos han dado excelente resultado. El tiempo de fijación 

 se rige naturalmente por el grosor del material. Si se hacen cortes á 

 mano de material fresco, bastan algunas horas (cuatro á seis); si el ma- 

 terial es para incluir en parafina (respectivamente celoidina) y cortarlo 

 con el micrótomo, se deja veinticuatro horas. 



2.° Del líquido fijador pasa el material al alcohol de 70*^ con tintura 

 de yodo, hasta que ésta no se decolora. Si son fragmentos para in- 

 cluir, V. gr., en parafina el alcohol puede ser de 80°, de 90° y aun absoluto. 



3,° Si se trata de cortes á mano, del alcohol de 70° se trasladan al 

 agua destilada (adonde han de venir á parar finalmente también las pre- 

 paraciones con cortes microtómicos antes de la tinción que sigue) me- 

 dia hora. 



4.° Tinción en fuchsina acida (solución acuosa al 0'2 por 100) veinti- 

 cuatro horas. 



5.° Lavado en agua todo el tiempo que sea necesario para diferenciar 

 los cristaloides, de modo que sólo éstos queden teñidos. 



6.° El montaje se puede hacer en gelatina-glicerina (2) ó en bálsamo 

 de Canadá ó resina damar (3). 



Los resultados del método nos los da la figura 1, que acompaña esta 

 nota y representa dos células del parénquima de la hoja de Pinguicula 

 grandiflora, donde los cristaloides rojos ó resáceos campean en medio de 

 las demás formaciones claras ó pálidas. 



(1) Yé&se Hartmann: Praktikum der Protozooloe:ie, págf. 3, 1909. 



(2) La g^elatina-glicerina hace palidecer á la larga la tinción de los cristaloidea ; 

 en cambio, conserva casi como en estado natural el contenido celular. 



(8) Hemos probado también el método empleado para el estudio de los crista- 

 loides protoplásmicos, v. gr., de la patata, fijando el material (cortes) en alcohol 

 pícrico (solución saturada) y tinción en eotina. Pero tratándose de cortes de la 

 hoja y, en general, de órganos verdes por la presencia de clorofila, no da ni puede 

 dar el método tan buenos resultados, porque la eosina tiñe en este caso con gran 

 fuerza los cloroplastos (granos de clorofila), los cuales entorpecen la observación 

 de las formaciones nucleares. 



