Nr, 8 Zentralblatt für Physiologie. 259 



der vom Vortragenden seit langem geübten Methode der polychromen 

 Serien und erleichtert ungemein den Einblick in den feineren Aufbau eines 

 zusammengesetzten Gewebes oder Organes. Die Wahl der Methoden richtet 

 sich selbstverständlich nach der Natur des Untersuchungsobjektes. 



Im vorliegenden Beispiele wurden kleine Klümpchen des frischen 

 Gewebes auf dem Deckglase zu dünnen Häutchen ausgespannt und ver- 

 schieden behandelt. Es werden der Reihe nach gezeigt: 



1. Das kollagene Grundgerüst des lockeren Bindegewebes, der 

 Haltbarkeit wegen nach der Mallory sehen Methode >) gefärbt. 



2. Die elastischen Fasern nach der Orceinmethode von Pranter.^) 

 Sie erscheinen vorwiegend von unmeßbarer Feinheit, so daß die feinsten 

 trotz der Färbung nur bei aufmerksamer Beobachtung gesehen werden 

 können ; die stärkeren messen wenig über 1 /.i. Auffallend ist auch der oft 

 auf lange Strecken unverästelte und vollkommen glatte Verlauf der Fasern. 



3. Ein Negativbild der Zellen nach der Silbermethode 3) dar- 

 gestellt. Diese Negativbilder erscheinen als verhältnismäßig große, unregel- 

 mäßige, oft mit ausgezogenen Ecken versehene, aber scharf begrenzte 

 Felder. Sie liegen selten vereinzelt, meist in Gruppen, die durch reichlichere, 

 braungefärbte Zwischensubstanz geschieden werden. Manche Gruppen sind 

 größer, umfassen sechs und mehr Zellen, die dann untereinander nur durch 

 feine Silberlinien nach Art eines Endothels getrennt erscheinen. Solche 

 Stellen entsprechen den von Endothel ausgekleideten Spalträumen im 

 Bindegewebe und machen die Übergänge typischer fixer Bindegewebszellen 

 in Endothelüberzüge an der Oberfläche von Sehnen, Sehnenscheiden usw. 

 verständlich. 



4. Ein Positivbild der Zellen nach der Methode von Loewen- 

 thal.^) Hier erscheinen die Zellen viel kleiner, weniger unregelmäßig; 

 neben ausgesprochenen Plättchenformen, an denen oft die Eindrücke der 

 anliegenden Faserbündel als helle Straßen hervortreten,^) sieht man viele 

 klumpige Formen, so daß man hier unbedingt eine Retraktion der Zellen 

 annehmen muß. Darin wird man bestärkt, wenn man mit diesem Objekt 



5. ein Präparat mit ungeschrumpften Zellen vergleicht. Die 

 Schrumpfung, d. h. Retraktion kann man ähnlich, wie bei den Knorpel- 

 zellen dadurch vermeiden, daß man das frisch gespannte Häutchen in eine 

 Alaunlösung von ^l-, oder mehr Prozent überträgt. Ich wählte als solche die 

 unverdünnte Hämatoxylinalaunmischung von Delafield, welche bei stunden- 

 langer Einwirkung (über Nacht) auch die Färbung der dünnen Zellhäutchen 

 besorgt. Nach Auswaschen und Entwässern in absolutem Alkohol wird 

 das aufgehellte Objekt in Dammarharz oder Kolophonium eingeschlossen. 



An solchen Präparaten sieht man die Felder des Silberbildes ein- 

 genommen von Protoplasmaleibern, welche um den Kern etwas dichter 

 sind, in der Peripherie sich aber in kaum mehr wahrnehmbare feinkörnige 

 oder feinwabige Häutchen verlieren, ß) welche man als Strombezirke der 

 Zelle auffassen kann. Soweit diese reichen, vermag das Silbersalz im frischen 

 Zustande nicht einzudringen und so erklären sich die großen Felder des 

 Negativbildes. 



1) The Journ. of experiment. med. Vol. V, 1900/01, p. 15. 



,2) Zentralbl. allgem. Path. path. Anat. Bd. 13, 1902, S. 292. 



3) Vgl. E. A. Schäfer, The essentials of histology 7. ed. 1907, 

 p. 67. 



■i) Zeitschr. wiss. Mikr. Bd. X, 1893, S. 309 und Arch. mikr. Anat. 

 Bd. 63, 1903, S. 389. 



5) Man vgl. die Fig. 6 bei Loewenthal, 1903, I. c. Diese hellen 

 Straßen schneiden oft den platten Kern, aber auch die ganze Zelle in zwei 

 Teile. Solche Bilder hat Loewenthal vielleicht als Ausdruck der direkten 

 Teilung gedeutet. Echte Amitose an diesen Zellen habe ich ebensowenig 

 wie Maximow (siehe unten 1. c. S. 690) gesehen. 



6) Man vgl. die sehr natui'getreuen Abbildungen bei A. Maximow, 

 Arch. mikr. Anat. Bd. 67, 1906, Taf. 33 und 35. 



