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hier ist wahrscheinlich die den einzelnen Protonemen zur 

 Verfiigung stehende organische Nahrung zu gering um eine 

 normale Sprossbildung zu erlauben. 



Zuletzt seien noeh erwähnt einige von G o e b e 1 (96. 

 S. 463) vorgeschlagene Experimenle: er erwartet, dass das 

 an Funaria hygrometrica-Blättern nach der Abtrennung ge- 

 bildete Protonerna sich betreffs der Sprossbildung ähnlich 

 verhallen werde (spät eintretend) wie das aus Sporen dersel- 

 ben Art entstandene, »wenri man die Funaria-Pflanze vorher 

 unter ungimstigen Bedingungen kultiviert öder wenn man 

 Blätter einer fruktifizierenden Pflanze nimnit». Mir scheint 

 es jedoch unsicher, ob das erhoffte Resultat wirklich erlangt 

 wird, denn unabhängig davon, ob bei der Abtrennung reich- 

 lich Assimilate im Blatte vorhanden sind öder nicht, miisste, 

 meines Erachtens, nach derselben, bei fortdauernder Kohlen- 

 säureassimilation, eine Sättigung in Bezug auf diese Stoffe 

 eintreten, durch den Mangel an Ableitung, sodass der Gehalt 

 an organischen Stoffen stets gross sein miisste, wenn die Pro- 

 tonemaentwicklung beginnt. Will man zuverlässige Resul- 

 tate erhalten, so muss man also auch zusehen, dass der Hun- 

 gerzustand des Blått es auch nach der Abtrennung möglichst 

 erhalten bleibt. Ich schlage folgende Anordnung des Experi- 

 ments vor: Blätter von Pflanzen, welche durch einige Tage 

 Dunkelhaltung ausgehungert worden sind, werden sofort 

 nach der Aussaat mit Stanniolplättchen zugedeckt, bis auf 

 einen geringen Flächenabschnitt, wo normal die Protonerna- 

 bildung einzutreten pflegt (bei den meisten Lebermoosarten 

 die Blattbasis). Parallelkultur: Blätter ebenso behandelter 

 Pflanzen werden in gleicher Weise, aber unbedeckt, kulti- 

 viert. Ausgefiihrt habe ich es jedoch leider nicht. 



Absolute Agarreinkulturen. Diese Versuche wurden (im 

 Mai 1909) folgendermassen ausgefiihrt. Es wurde eine Mine- 

 ralsalzagarlösung A, und vier auch organische Stoffe enthal- 

 tende Agarlösungen B — E hergestellt: 



A. Agar-agar 2 % KN0 3 0.12 % KM . P0 4 0.08%, 

 MgSOt 0.0*3 %, CaCl 2 0.03 %, Fe 2 Cl e Spur. 



B. 0.50 % Traubzenucker, sonst wie A. 



