REVUE. DE TECHNIQUE, 
H0c.c. d'eau d'aniline ; on chauffe un peu sans faire bouillir, il n'y à pas 
d'inconvénient à ce que le liquide se dessèche sur la coupe, puis au bout de 
deux à cinq minutes on lave dans une solution contenant deux parties d'eau 
pour une d'une solution alcoolique concentrée d'acide picrique; on chasse 
l'acide picrique par l'alcool absolu, on met dans le xylol, puis l'on monte 
dans le baume. De cette facon on colore les leucoplastes des jeunés tissus et 
aussi des corpuscules spéciaux du tissu assimilateur, des sortes de granules. 
En plaçant les coupes dans une solution aqueuse de fuchsine acide à 
(2 p. 100 pendant vingt-quatre heures au moins, puis lavant dans l’eau 
turante, on voit très neltement colorés les granules du tissu assimilateur 
dont il est question plus haut, les grains de chlorophylle, qui dans la suile 
du traitement ont été décolorés, restent incolores ainsi que les nucléoles; 
äi contraire dans les noyaux de diverses Fougères et cerlaines Phanéro- 
games on aperçoit fortement colorés des cristalloïdes protéiques. 
Le vert d'iode en solution concentrée colore parfaitement les chromato- 
phores, surtout si ensuite on fait agir le brun de Bismarck; après lavage ces 
chromatophores sont verdâtres ou violets, le reste étant brunûtre. Si après 
h coloration on fait agir une solution étendue de potasse ou d'ammoniaque, 
ls noyaux colorés auparavant se décolorent presque entièrement, et sont 
iérdâtre clair, tandis que les chromatophores sont presque violets. La 
lichsine ammoniacale aussi colore fortement ces éléments. 
Ajoutons ici quelques mots sur les colorations des Bactéries. 
Les méthodes employées pour colorer les Bactéries Sont nombreuses ; il 
mous est impossible de les exposer toutes avec détails, signalons la suivante 
üilé surtout pour colorer des Bactéries, développées dans des tissus (1). 
Les coupes des tissus durcis déjà à l'alcool sont transportées dans le 
bleu de méthylène phéniqué et on les y laisse environ une demi-heure, 0 
le à l'eau pure puis à l’eau acidulée de façon à ne laisser subsister qu'une 
lès faible coloration bleue ; on transporte ensuite dans une solution rs 
hate de lithium et les coupes doivent y rester un temps assez variab A 
lant l'épaisseur de la coupe, son degré de coloration, a eg ras | 
“ur toutes ces questions de temps il est impossible de donner. 
el : : RE L i : disons seulement 
_ Mises, chaque anatomiste doit acquérir l'expérience; GISODS ctif, une 
Me les coupes ne doivent rester que peu de temps dans ce pra 
Simple immersion suffit parfois. On relave à l’eau pure, puis _. 
Jar l'alcool absolu. On place ensuite les coupes dans un 
és Vlène et d'huile d'anitine, puis dans l'huile d’aniline puré; SN de 
tébenthine. On éclaircit par un bain où même deux a abs 
‘1 pour enlever la térébenthine, et enfin l'on monte ee é phe 
‘rtrs bains que nous avons indiqués dans le courant du parag 
ent sont constitué facon suivante : ai 
leu de De sure we dissout 1 gr. 4/2 de bleu de ns 
i #0 , ê toute progressivemer" 
11 10 centimètres cubes d'alcool absolu, puis on ajoui* P olorant de 
0 cc. d'une solution à 5 p. 100 d'acide phénique. Le FRE d 
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> VOL X, 1889). > 
Rev. gén. de Botanique. — Il. 
