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Mycels ein kleines Stück (Steckling) aus und übertrug es auf 

 neuen Agar-Xährboden. Wenn stark bewegliche Bakterien als 

 Verunreinigung vorhanden waren, so stellte ich die Kulturen 

 vertikal und entnahm den Steckling aus dem oberen Mycel- 

 rande. Durch mehrmalige Wiederholung dieses Verfahrens ge- 

 lang es, selbst aus sehr stark infiziertem Material reine Mycel- 

 kulturen zu erhalten. 



Fruchtkörper produzierten indessen die Mycelien nur in 

 geringer Zahl. Um mehr zu bekommen, setzte ich dem Nähr- 

 boden einige Prozent Zucker (Rohrzucker, Traubenzucker) zu, 

 aber ohne den gewünschten Erfolg. Die Mycelien wurden mit 

 zunehmendem Alter dichter und dichter und nahmen schließlich 

 ein filzähnliches Aussehen an, aber Fruchtkörper entstanden 

 überhaupt nicht. 



Nach längerem Probieren machte ich schließlich ein Kultur- 

 verfahren ausfindig, nach dem man jederzeit reichliches Material 

 erhalten kann. Ich stellte in eine größere Petrischale eine 

 kleinere flache Glasschale (Textfig. i). Die letztere wurde bis 

 zum Rande mit einem Nährsubstrat gefüllt, das bestand aus: 

 20/0 Agar-Agar, 



2% Inulin puriss., (Nährboden 2) 



0,05 Vo KH,.P04, o,o57o NH,N03, 

 o,o27o MgS04, 0,001% Fe3(P04)2, H,0 ca. 950/0- 

 In den zylinderringförmigen Raum, der sich zwischen der 

 Einsatzschale und der größeren Petrischale befindet, wird bis 

 zur Höhe des Randes der Einsatzschale ein Nährboden aus 

 2 7o Agar-Agar, 



o,o5»/o KH2PO4, 0,05 NH4.N03, 

 o,o27o MgSO^, o,ooi7o Fe2(P04)3, 

 H,0 ca. 97 7o 

 gefüllt. 



Schalen und Nährboden werden vorher sterilisiert. 

 Man bringt in die Mitte des Nährbodens in der Einsatz- 

 schale Sporen oder einen Mycelsteckling. Die Hyphen durch- 

 wachsen den inulinhaltigen Nährboden sehr bald, überschreiten 

 den Rand der Einsatzschale, dringen in den äußeren Nährboden 

 ein und fruktifizieren hier reichlich. Die gröberen Züge der 

 Fruchtkörperentwicklung lassen sich leicht an lebendem Material 



