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Alexandrine Haenicke, 



Abänderung'. Morphologisch unterscheidet sie sich jedoch nur da- 

 durch von Asp.niger, daß alle Konidien der Köpfchen schwächer 

 pigmentiert sind. Alle Ausmaße von Konidienträgern und Mycel- 

 fäden dagegen sind genau die gleichen wie bei der Stammrasse. 



Xäher noch als proteus und proteoides scheinen sich auf den 

 ersten Blick fuscus (auch nach meinen Befunden) und fuscoides 

 zu stehen. Abgesehen von der Verfärbung der Nährlösung, 

 die fuscus abgeht, und der rötlichbraunen anstatt umbrabraunen 

 Deckenfarbe ist der Hauptunterschied gegenüber fuscus nur in 

 dem Eisenhunger zu suchen, der jenem gänzlich mangelt. Seit 

 mehr als 30 Generationen (1^/2 Jahr) fruktifizierte fuscus rasch 

 und üppig auf Nährlösung bei 35" C, genau wie die Stammrasse, 

 ohne je eine Spur von Eisenzusatz, während fuscoides ohne 

 diesen kümmerlich wuchs und auf die Dauer nicht zu gedeihen 

 vermochte. 



b) Zytologische Befunde. 



Sie vor allem hielten mich davon ab, proteoides mit pro- 

 teus und fuscoides mit fuscus zu identifizieren. 



Burgeff (19 12) suchte die Variantenbildung bei Phycomyces 

 nitens durch die Annahme der Heterokaryose zu erklären, wobei 

 die Kerne verschiedenartig und verschiedenwertig gedacht sind. 

 Es erschien mir daher wünschenswert, meine Aspergillusformen 

 auch zytologisch zu untersuchen, um festzustellen, ob eine solche 

 Möglichkeit auch bei ihnen angenommen werden kann. 



Das Verfahren wurde denkbar einfach gestaltet: 



Mittelst eines Glasstabes wurden Objektträger, wie photographische Platten, 

 mit einer feinen Malzagarhaut von wenigen [jl Dicke überzogen, indem ein 

 Tropfen Agar auf den Objektträger getropft und mit dem Glasstabe ausgerollt 

 wurde. In dem noch flüssigen Agar wird mit der Impfnadel etwas Sporen- 

 material verteilt, möglichst so, daß die Sporen vereinzelt zu liegen kommen. 

 Im Thermostaten läßt man darauf, nachdem man die Objektträger in die 

 feuchte Kammer gebracht hat, keimen. In Zwischenräumen von 20 Minuten, 

 y^ Stunde oder länger untersucht man mikroskopisch, wie weit die Keimung 

 fortgeschritten ist und fixiert die einzelnen Stadien durch Eintragen der Ob- 

 jektträger in ^/lo Mittelflemming, in der sie 24 Stunden bleiben. Bei Optimal- 

 temperatur setzt die Keimung in 3 — 7 Stunden ein und schreitet dann rasch 

 vorwärts, so daß man in wenigen Stunden alle in Frage kommenden Entwick- 

 lungsstadien erhält. Aus der Fixierungsküvette gelangen die Objektträger 

 2 Stunden in fließendes Wasser, werden 6 — ^8 Stunden in 2 proz. Wasserstoff- 

 superoxyd gebleicht und in 2 proz. Eisenalaunlösung übergeführt, worin sie 



