AGENTS DÉCOLORANTS. 383 



Bacille rouge de la sardine (Dubois Saint- Bacillus tracheiphilus (Smith). 



Sévrini. — lurcosa Zimmermann). 



Bacillus ruber (Zimmermann). — typhi murium. 



— saccharohulyricus. — typhosus. 

 Bacille de la septicémie des canaris. — urese. 



— de la septicémie du faisan. — violaceus. 



— de la septicémie des furets. Cladnlhrix actinomyces (massues). 



— de la septicémie de la grenouille. Micrococcus catarrhalis. 



— de la septicémie hémorragique du — gonorrheœ. 



cheval. Micrococcus inlracellularis meningitidis. 



— de la septicémie hémorragique des — melitensis. 



bovidés. — orchitis. 



— de la septicémie du lapin. Microcoque de la mammite de la chèvre. 



— de la septicémie des veaux (Tho- Microcoque des oreillons (Laveran et 



massen). Catrin). 

 Bacillus seplicus (peut rester coloré après Sarcina pseudognnorrhese (Nagano). 



l'action prolongée du colorant). Spirillum berolinense. 



Bacillus septicus pulridus (Roger). — choleree. 



— suipestifer. Spirille d'Iwanoff. 



— suisepticus. — nasal (Weibel). 



— synxanthus. Spirillum tonsillare. 



Il y a certainement des espèces pour ainsi dire indifférentes à l'égard 

 de la méthode de Gram, qui restent colorées dans certaines conditions 

 et se décolorent dans d'autres. C'est ce qui peut expliquer en partie les 

 divergences que l'on remarque dans l'opinion de bien des auteurs. 



Les Bactéries qui se décolorent par la méthode de Gram, peu aptes à 

 conserver les couleurs d'une façon générale, demandent, pour être 

 toujours bien colorées, l'application de procédés spéciaux basés sur 

 l'emploi de produits jouant le rôle de mordants, favorisant la fixation du 

 colorant. 



On peut se servir, dans ce but, de plusieurs des solutions indiquées 

 précédemment (p. 375), surtout de celles à base d'eau anilinée, d'acide 

 phénique, de borax. Certaines méthodes donnent, dans ce cas particu- 

 lier, de meilleurs résultats. 



Nicolle (1) conseille de colorer les lamelles ou les coupes dans le bleu 

 de Lœffler ou de Kiïhne, de laver et de les traiter par une solution 

 aqueuse de tannin à 1 p. 10 dont l'action est instantanée. On lave à 

 l'eau, puis on peut déshydrater à l'alcool absolu, éclaircir à l'essence 

 de girofles, passerai] xylol et monter dans le baume au xylol. 



Garnier (2) dit qu'il est préférable, avant de colorer en bleu, de traiter 

 par la solution de Gram forte (p. 380), laver et colorer au bleu de 

 Kiihne, puis faire agir pendant une ou deux minutes le molybdate 

 d'ammoniaque en solution suivant la formule ci-dessous : 



Molybdate d'ammoniaque cristallisé 1 gramme. 



Eau distillée 10 grammes. 



Laver minutieusement à l'eau distillée, surtout pour les coupes, 

 passer à l'alcool absolu, à l'essence de girofles, au xylol, et monter dans 

 le baume. On peut, auparavant, faire une double coloration convenable 

 pour le fond. 



(1) Nicolle, Méthode de recherche des microorganismes qui ne se colorent pas par 

 le procédé de Gram {Ann. de Vins t. Pasteur, VI, 1892, p. 783). 



(2) Garnier, Nouveau procédé de coloration pour les Bactéries qui ne prennent pas 

 le Gram (Presse mec/., 26 janvier 190 1 ». 



