

MICROCOCCUS 1NTRACELLULARIS ME.MNGITIUIS. .">07 



cose et le mail ose en donnant, un aeide organique, qui peut alors faire 

 virer de la teinture de tournesol ou modifier d'autres matières colorantes. 

 Non Ligelsheim se sert d'une solution de 10 p. 100 de glucose dans 

 de l'eau légèrement tournesolée avec de la teinture bien neutre, qu'il 

 stérilise par plusieurs chauffages à 100° pour éviter toute caramélisation. 

 A I3 ce ,5 de gélose-ascite liquide il ajoute l cc ,.") de solution sucrée tourne- 

 solée. Le mélange bien effectué est coulé en boite de Pétri. Après 

 solidification, on ensemence en stries le produit de culture et on met à 

 l'étuve à 37°. Après vingt-quatre heures, on distingue les stries ou les 

 colonies qui ont rougi le milieu. 



Dopteret Koch (1) recommandent la gélose-ascite additionnée déroute 

 neutre, employée de la façon suivante : on prend 7") centimètres cubes 

 de gélose ordinaire à laquelle on ajoute 1 gramme de glucose. On stéri- 

 lise, on refroidit au-dessous de 60°, puis on ajoute "25 centimètres cubes 

 de liquide d'ascile et 1 centimètre cube dune solution stérilisée de 

 rouge neutre à 1 p. 100. Le milieu prend une teinte orangée. On 

 maintient le mélange au bain-marie à 60° pendant une heure environ, 

 jusqu'à ce qu'il se forme un fin précipité grâce auquel la réaction colo- 

 rante sera beaucoup plus nette (on peut cependant négliger cette recom- 

 mandation). On agite et répartit en trois ou quatre boîtes de Pétri. 

 Après prise du milieu, on ensemence par stries, comme il a été dit 

 plus haut, et on met à l'étuve, à 37°, en ayant soin de retourner les boîtes. 

 Avec le Méningocot/ue, les stries ou les colonies ont une teinte rouge 

 carminé caractéristique qui contraste nettement avec la teinte jaunâtre 

 du milieu. 



Si l'on a beaucoup de colonies à vérifier, pour éviter la confection 

 d'un grand nombre de plaques on peut recourir à l'artifice suivant. 

 A l'aide de traits à l'encre faits sur l'extérieur du fond du cristallisoir 

 qui contient la gelée, on divise la surface en un certain nombre de 

 secteurs, huit, dix, jusqu'à une vingtaine, et au milieu ou vers la partie 

 extérieure, mais jamais tout près du bord à cause des contaminations 

 plus faciles, de chacun de ces secteurs, on ensemence par un gros point 

 les colonies à examiner. Un numéro placé à l'angle des secteurs per- 

 met facilement les distinctions. 



On peut aussi se servir de bouillon glucose à I p. 100, additionne 

 d un tiers de liquide d'ascile ou de sérum, puis de solution stérilisée de 

 rouge neutre. Avec le Méningocoqùe, le lendemain la coloration a passé 

 au jaune-canari avec fluorescence verte. 



Agglutination. Le sérum antiméningococcique agglutine le 



Méningocoqueh un tauxassez élevé, généralement à 1 p. 500ou 1 p. 1000. 

 On peut faire l'agglutination microscopique : il esl plus simple de 

 pratiquer l'agglutination macroscopique. On prépare une série de dilu- 

 tions de sérum, prenons celui de Dopter, dans l'eau physiologique à des 

 taux variés, 1/10, 1/50, 1 100, 1/200, l/500par exemple. On met, dans 

 de petits tubesà agglutination, I centimètre cubeenviron de chaquedilu- 

 lion et on y émulsionne parfaitement, sans grumeaux, une ose de la cul- 

 ture sur gélose-ascite âgée d'une vingtaine d'heures. Les tubes sont 

 placés vingt-quatre heures dans l'étuve à 37°. En examinant les tubes 



ili Dopteh et Koch, Action du Méningocoque cl <lc- Bactéries similaires sur les 

 milieux sucres au neutralroth {Soc. de, Biol., 2 5 octobre 1908). 



