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sur un bec Bunsen, en agitant constamment. Le liquide s'éclaircit par 

 l'ébullition et est ensuite stérilisé dans la vapeur, par le procédé ordi- 

 naire. L'addition de nutrose, mélange de caséine et de phosphate de 

 soude, empêche la coagulation du sérum. Le milieu peut être employé 

 liquide, ou additionné de gélose. On ajoute alors au produit la valeur 

 de six à huit tubes de gélose peptonisée à 2 p. 100 maintenue liquide 

 vers 50°; on mélange, on coule dans des boîtes de Pétri stérilisées et on 

 laisse prendre par refroidissement. 



On ensemence en strie à la surface et l'on met à l'étuve. Au bout de 

 vingt à vingt-quatre heures, on voit se développer un plus ou moins 

 grand nombre de petites colonies grisâtres, semblables à des gouttes de 

 rosée, qui grandissent et, après vingt-quatre heures, ont les dimensions 

 d'une petite tête d'épingle. 



Méthode de Heiman. — Heiman (1) dit grand bien d'un milieu formé 

 du mélange à deux tiers de gélose peptonisée à 1 p. 100 maintenue 

 liquide, à 10°, de un tiers de sérum de pleurésie, stérilisé d'avance 

 par chauffages répétés entre 65° et 70°. Le mélange doit être neutre ; 

 si le sérum était alcalin, il faudrait employer une gélose légèrement 

 acide. 



Méthode de Wildbolz. — Wildbolz (2) se sert d'une gélose addi- 

 tionnée de 5 p. 100 de pseudo-mucine, matière albuminoïde obtenue en 

 précipitant par l'alcool le liquide de kystes ovariens, séchant et pulvé- 

 risant. Les colonies obtenues sur ce milieu pourraient présenter un aspect 

 opaque et blanchâtre. 



Méthode de Lipschutz. — Lipschùtz (3) utilise de la poudre d'albu- 

 mine d'œufs qui se trouve dans le commerce. Cette poudre est dissoute 

 en proportion de 2 p. 100 dans de l'eau ordinaire; on ajoute au liquide 

 20 p. 100 de solution de soude caustique au dixième : on filtre sur papier 

 et répartit le liquide jaunâtre, alcalin au tournesol, dans des ballons par 

 quantités de 30 à 50 centimètres cubes. C'est ce liquide qu'on mélange 

 à la gélose en proportion de 1 partie pour 2 ou 3 de gélose. 



Le Gonocoque se cultive très bien sur ce milieu facile à préparer. 



Gélose au sang. — On peut obtenir aussi de bons résultats en 

 étendant simplement à la surface de gélose, à l'aide d'une ose de platine, 

 quelques gouttes de sang humain frais et recueilli aseptiquement, selon 

 la méthode de Pfeiffer (gélose sanglante) ; ou en se servant de la gélose 

 au sang de Bezançon et Griffon (p. 249). 



Gélose à l'urine. — Steinschneider (4), puis Finger, Ghon et Schla- 

 genhaufer (5) recommandent l'emploi de milieux à base d'urine (par- 

 ties égales d'urine humaine et de gélose peptonisée ou une partie 

 d'urine et deux parties de gélose). 



(1) Heiman, A clinical and bacteriological Study of the Gonococcus (A'eio York Mcd. 

 Record. 22 juin 1895). — I»., A t'urther SLudy of the biologie of the Gonococcus 

 [New York med. Record, 19 décembre 1896). 



(2) Wildbolz, Bacteriologische Studien iiber Gonokokkus (Arch. fur Dermal., 

 1903, LXIV, p. 225). 



(3) Upschutz, l'eber eincn einfachen Gonokokkennâhrboden (Central!)!, fur Bakt., 

 Orig.. XXXVI, 1904, p. 743). 



(4) Steinschneider, Biologie der Gonokokken [Berlin, klin. Wochensehr., 1895, 

 p. 984). 



(5) Finger, Ghon et Schlagenhaufer, Beitriige zur Biologie des Gonococcus (Cen- 

 tralbl. fur Bakt., XVI, 1894, p. 350). 



