138 JI- Eiweißrenktioneu. Kernfärbuug. 



von Benzaldehyd enthalten soll; dann werden sie auf den Objektträger 

 gelegt, leicht mit Fließpapier abgetrocknet und mit 1 oder 2 Tropfen 

 einer Schwefelsäure, die mit gleichem Volumen Wasser verdünnt wurde, 

 und die man mit Spuren von Eisensulfat versetzte, behandelt. Bei An- 

 wesenheit von Eiweißkörpern erfolgt Blaufärbung; die Reaktion wird 

 durch Erwärmen beschleunigt. Unter Umständen ist es nötig, stark 

 zu erwärmen (Reaktion von Reichl und Mikosch). Doch färben sich 

 nicht alle Proteinstoffe in gleicher Weise, so Legumin, Kasein, Blutfibrin 

 und Albumin blau, Glutin violett, Pflanzenfibrin gelbbraun, tierisches 

 Fibrin schwach gelb. Außerdem färben sich aber auch andere Körper; 

 so werden blau: Papain, Koniferin; violett: Emulsin, Pepsin, Veratrin 

 und Furfurol; gelb oder auch braun: Weizenstärke, Tannin, Olivenöl, 

 Methylamin, Asparagin, Atropin, Bruzin, Morphin, Koffein, Papaverin; 

 Pikrotoxin, Vanillin, Arbutin, Oxalsäure, arabisches Gummi und Rohr- 

 zucker; Salizin gibt einen ziegelroten Niedei-schlag, Narzein eine rotbraune. 

 Solanin eine schön karminrote Lösung, die später violett wird. Die als 

 RASPAiLsche bekannte Eiweißreaktion mit Zuckerlösung und Schwefelsäure 

 gibt Rotfärbung auch bei Öl und auch bei Körpern mit aromatischem 

 Kern. Sie gelingt andererseits nicht mit allen Eiweißkörpern, so z. B. 

 niclit mit Rhodospermin. 



. Folgende Koagulationsmethode ist neuerdings zum Nachweis von im 

 pflanzlichen Zellsaft gelösten Eiweißstoffen besonders empfohlen 

 worden. Die Eiweißstoffe lassen sich durch Einwirkung von Koffein zur 

 Abscheidung bringen, und zwar entstehen dabei glänzende, runde Körper- 

 chen von großer, chemischer Veränderlichkeit, sog. Proteosomen, die zu 

 größeren Kugeln verschmelzen können. Der Proteingehalt dieser Proteo- 

 somen läßt sich vor allem an ihrem Verhalten in Hitze (bei 50 — 56 o) oder 

 in verd. Säuren und in 20-proz. Alkohol feststellen, bei deren Einwirkung 

 sie koagulieren^). 



Geht man im besonderen darauf aus, die Zellkerne in den Zellen 

 der ruhenden Samen nachzuweisen'-), so empfiehlt sich eine 24 Std. 

 lange Vorbehandlung der Schnitte mit Alk. abs., wodurch der Inhalt 

 der Zellen einerseits fixiert, andererseits eine Entfettung der ölhaltigen 

 Samen bewirkt wird. Als Färbungsmittel des Zellkerns leistet hierauf in 

 stärkehaltigen Samen besonders Delafields sches Hämatoxylin in kleber- 

 mehlhaltigen wässr. Methylenblau gute Dienste. Letzteres färbt vor allem 

 das Kernkörperchen und läßt es deutlich hervortreten. Werden die stärke- 

 haltigen Schnitte weiterhin entwässert und mit Nelkenöl aufgehellt, so 

 verschwinden die Stärkekörner fast aus dem Bilde, und der gefärbte 

 Zellkern tritt um so deutlicher hervor. In klebermehlhaltigen Zellen 

 stören die Aleuronkörner sehr, da auch sie Farbstoff aufspeichern; es ist 

 daher angezeigt, sie zu entfernen. Das gelingt bei den schwer löslichen 

 Aleuronkörnern durch 24-stündige Einwirkung einer schwach angesäuerten 

 Lösung von Pepsin-Pankreatin-Glyzerin (einer Mischung von 1 T. Pepsin- 

 Glyzerin, 1 T. Pankreatin-Glyzerin und 20 T. 0,3-proz. Salzsäure) auf die 

 Schnitte; bei den leicht löslichen durch Einwirkung von 0,3-proz. Salz- 

 säure. Gilt es, die Veränderungen zu verfolgen, welche die Zellkerne 



1) O. LOEW u. Th. Bokorny, Flora, CI, 1911, S. 113. Über weiteres Verhalten 

 der Proteosomen vgl. noch O. LOEW, Flora, CIX, 1916, S. 61 ff. 



2) Vgl. W. KoEPPEN, Inaug.-Diss. Jena 1887, S. 7 ff . S. a. dies. Absclan. S. 120. 



