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der Leukoplasten und Chromatophoren überhaupt erzielen. Die Objekte 

 müssen bis 24 Std. in ihr verweilen, und das Sublimat dann völlig aus- 

 gewaschen werden^). Die Färbung gelingt hierauf sehr schön mit Säure- 

 fuchsin, und zwar einer 0,2-proz. Lösung in Aq. dest., in welcher die Schnitte 

 bis 24 Std. verweilen dürfen. Dann folgt Auswaschen in fließendem 

 Wasser, das je nach Umständen kürzer oder länger zu dauern hat; hierauf 

 untersucht man in Glyzerin oder läßt die Präparate an der Luft aus- 

 trocknen, um sie in Kanadabalsam einzuschließen. Entwässern mit Alkohol 

 zur Übertragung in Kanadabalsam ist nicht zulässig, da die Chromato- 

 phoren dabei entfärbt werden 2). — Dieser sehr ähnlich ist die folgende 

 Fixierungs- und Färbungsmethode: Die Schnitte werden in Sublimatalkohol 

 (5 g Sublimat in 100 ccm Alk. abs., der zuletzt mit 10 Tropfen Salzsäure 

 angesäuert wird) fixiert. Die fixierten und entfärbten Präparate werden 

 dann zur Entfernung des Sublimats mehrmals in frischen 95-proz. Alkohol 

 gelegt. Die Färbung wird mit Säurefuchsin (20 g Säurefuchsin, 3 ccm Anilinöl^ 

 200 ccm Wasser) in ca. 18 Min. vollzogen. Dann wäscht man mit Pikrinsäure 

 (50 ccm gesätt. alkohol. Pikrinsäurelösung und 100 ccm Wasser) so lange 

 aus, bis kein Farbstoff mehr abgegeben wird, legt dann in Alkohol, um die 

 Pikrinsäure zu entfernen, und schließlich 15 Min. lang in Chloroform^). 



Wir wollen den Umstand, daß uns Scheinknollen von Phajus grandi- 

 folius zur Hand sind, auch benutzen, um die Indikan-Reaktion an 

 ihnen vorzunehmen^). An angeschnittenen Scheinknollen, deren periphe- 

 rische Zellschicht, der Luft ausgesetzt, langsam abstirbt, ist meist schon 

 eine Blaufärbung zu bemerken, die der Spaltung des Indoxylglykosids, 

 Indikan^), unter Bildung von Indigblau, ihre Entstehung verdankt. Taucht 

 man Schnitte der Scheinknollen in 40-proz. Alkohol, so wird Indigblau in 

 den Zellen gebildet. Dessen Menge ist aber nicht sehr groß, da das Indikan 

 in Alkohol löslich ist und z. T. herausdiffundiert. Hingegen wird man 

 eine sehr schöne Reaktion erhalten, wenn man auf einem Objektträger 

 liegende, kleine Stücke der Scheinknolle in einem geschlossenen Gefäß 

 etwa 24 Std. lang Alkoholdämpfen aussetzt. In einer gut schließenden 

 Glasdose, in der man das Präparat und ein Schälchen mit Alk. abs. unter- 

 gebracht hat, wird die Reaktion in erwünschter Weise vor sich gehen. 

 Ein Austrocknen der Gewebestückchen kann man durch Anbringen von 

 nassem Fließpapier an der Innenseite der Glasdose verhindern. Das Indikan 

 wird durch die Alkoholdämpfe in den Zellen zerlegt und Indigblau ge- 

 bildet, doch nicht durch den direkten Einfluß des Alkohols, vielmehr unter 

 dem Einfluß der Zellsäfte, die in den durch die Alkoholdämpfe getöteten 

 Zellen auf das Indikan einwirken. Durch Einlegen der Gewebestückchen 

 in Alk. abs. kann man hierauf ihnen den Chlorophyllfarbstoff entziehen. 

 Die charakteristische Blaufärbung des Indigblau und damit die ursprüng- 

 liche Verteilung des Indikans läßt sich jetzt direkt mit bloßem Auge ver- 

 folgen. Zur mikroskopischen Untersuchung überträgt man Schnitte aus so 



1) Vgl. hierzu S. 64. 



*) Nach A. Zimmermann, Die bot. Mikrotechnik, S. 197, 198. Auch 2. Aufl.^ 

 herausg. von H. Schneider, Jena, 1922, S. 336 ff. 



') A. Meyer, 1. c. 1895, S. 166. Im wesentlichen nach dem Altmann sehen Ver- 

 fahren. Über andei'e Fixierungsmittel vgl. S. 158. 



*) H. MouscH, Sitzber. d. Wien. Akad., Math.-Nafc. KL, Bd. CII, 1893, S. 269, 



^) Vgl. dazu M. W. Beijerinck, Kon. Ak. Wetensch. Amsterdam, Reprint, fr, 

 Proceed. Meeting 30. Sept. 1889, 31. März ii. 30. Juni 1900. Ferner Fr. Czapek, Bio- 

 chemie der Pflanzen. 2. Aufl., III. Bd., 1921, S. 362, bzw. 3. Aufl. 1922, Ebenda, 



