174 V. Pektinnachweis. 



werden auch der protoplasmatische Zellinhalt, die verholzten, verkorkten 

 und kutinisierten Membranen vielfach mit gefärbt; daher eignen sich nur 

 bestimmte Farbstoffe und diese auch nur bedingungsweise zu einer Färbung 

 der Pektinverbindungen; es sind das besonders Safranin, Methylenblau und 

 kristallisiertes Naphtylenblau R. Safranin färbt die plasmatischen Inhalts- 

 körper der Zelle, ferner die verholzten Wände, die verkorkten und die 

 kutinisierten Häute kirschrot, während die Pektinverbindungen damit eine 

 orangerote Färbung annehmen. Das Methylenblau färbt die plasmatischen 

 Körper und die verholzten Wände schön blau, die Pektinverbindungen 

 dagegen violettblau. Besonders wird dieser Farbenunterschied kenntlich, 

 wenn man als Lichtquelle für das Mikroskop das gelbe Licht einer Naph- 

 talinlampe benutzt. Läßt man nach vollzogener Färbung mit Safranin 

 oder Methylenblau eine saure Flüssigkeit (Essigsäure, Milchsäure) in Über- 

 schuß unter das Deckglas treten, so bleiben die plasmatischen Körper 

 sowie die verholzten Membranen gefärbt, während die Pektinverbindungen 

 sich entfärben. Auch empfiehlt es sich, als Tinktionsmittel ein Gemisch 

 von je 1 g Naphtylenblau R in Kristallen und Säuregrün JEEE (Poikier) 

 gelöst in 100 ccm Wasser anzuwenden. Dieses Farbengemisch färbt grün 

 die plasmatischen Körper, die verholzten und die kutinisierten Wände, 

 während die Pektinverbindungen sich violett tingieren. Die Färbungen 

 der verholzten und kutinisierten Wände werden besonders schön, wenn 

 man die Schnitte zuvor mit Kalilauge oder Javelle scher Lauge behandelt 

 hat, und halten sich eine Zeitlang in Dauerpräparaten, wenn man als 

 Einschlußflüssigkeit 2-proz. Borsäure wählt. Solche Präparate müssen mit 

 einem Gemisch von Vaselin und Paraffin, das man warm mit dem Pinsel 

 aufträgt, verschlossen werden. 



Durch Neutralviolett 1) lassen sich schöne, differente Färbungen in 

 pektinhaltigen Geweben bewirken. Dieser Farbstoff tingiert nämlich die 

 Pektinverbindungen rotbraun, Holz und Kork dunkelviolett. Zellulose und 

 Kutin bleiben ungefärbt, ebenso Kailose. Man gebraucht zur Tinktion 

 wässrige Lösungen. In einer Lösung von V10030 färben sich die Schnitte in 

 3 — 5 Min.; in einer von ^/jooo S^ht die Färbung viel schneller vor sich. 

 Die Lösungen halten sich unbegrenzt, doch müssen sie etwas sauer sein, 

 da sie bei Gegenwart von Alkalien sich zersetzen vind alsdann braun 

 werden. In Wasser, verd. Glyzerin und Kanadabalsam entfärben sich die 

 Schnitte nicht. In Alkohol verlieren sie im Verlauf einiger Stunden ihre 

 Farbe. 



Zvim Nachweis von Pektinstoffen und Zellulose nebeneinander in den 

 pflanzlichen Zellhäuten ist besonders die Behandlung der Präparate mit 

 Delaeields' Hämatoxylin, das als eine ausgezeichnete Spezialfarbe für Pektin- 

 stoffe angegeben wurde, kombiniert mit dem GiLSONSchen Verfahren zur 

 Auskristallisierung der Zellulose (S. 172) und Färbung mit Kongorot 

 empfohlen worden^). 



Als ein wertvolles Mittel zur Färbung der Pektinverbindungen, wenn auch 

 nicht vom Wert eines speziell für die Pektinverbindungen charakteristischen 

 Reagens, stellte sich auch das im Dunkeln aufzubewahrende Ruthenium- 

 rot, ammoniakalisches Rutheniumsesquichlorid, heraus ^), ein brillanter, roter 



1) M. GoDFßiN, Bull, de la soc. Bot. de France, T. XLVI, 1899, S. 324. 

 *) E. Carano, Aimali di Bot., Bd. VII, 1909, S. 707. 



=») Vgl. L. Mangin, Compt. rend. Acad. Paris, 20. März 1893, und Bull, de la 

 soc. Bot. de France, T. XLI," 1894, S. XL. 



