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für Schlingpflanzen überhaupt charakteristischen Ausbildung meist Platten, 

 welche die ganze Höhe eines Internodiums erreichen; sie können aber 

 auch — was sich an aufeinanderfolgenden tangentialen Schnitten feststellen 

 läßt, vor deren Herstellung man auf der jeweiligen Schnittfläche durch 

 Phlorogluzin-Salzsäure (vgl. S. 267) die un verholzten, hell bleibenden Mark- 

 strahlen gegen die durch das Reagens rotgefärbte verholzte Umgebung 

 hervorheben kann, — nach der Peripherie zu sich teilen, in übereinander- 

 stehende Streifen zersplittern, und so einem Kamm gleichen, dessen nach 

 dem StammäuJ3ern gerichtete Zähne an der Markverbindung iDefestigt sind. 

 So ist der ganze Aristolochia- Stamm von gröi3en, zarten Gewebeplatten 

 durchsetzt, worauf seine bedeutende Torsionsfähigkeit zurückzuführen 

 ist, die z. B. der Buche fehlt, bei der die großen Markstrahlen fächerartig 

 in tangentialer Richtung das Holz diirchsetzen ^). Die Höhe der sekundär 

 eingeschalteten, kleinen Markstrahlen nimmt in rascher Folge ab. 



Wählt man ein im Winter, vor Beginn der Vegetation, in Alkohol 

 eingelegtes Stammstück zur Untersuchung, so ist die Stärke aus den Zellen 

 verschwunden. Untersucht man ein Stammstück um die nämliche Jahres- 

 zeit frisch, so findet man an Stelle der Stärke gelbe, stark lichtbrechende 

 Fettropfen in den Zellen. Eine ähnliche Umwandlung erfährt die Stärke 

 in vielen einheimischen Holzpflanzen während des Winters. Aus dem 

 Alkohol-Material sind die Fettropfen verschwunden. 



Da es immerhin nicht geringe Schwierigkeit bereitet, aus den kompli- 

 zierten Bildern, wie sie die Schnitte durch das Holz bieten, richtig die 

 einzelnen Elemente herauszufinden, so wollen wir es versuchen, uns auch 

 nach einer anderen Methode zu orientieren. Wir nehmen das sog. Schulze sehe 

 Mazerationsverfahren zu Hilfe, und zwar übergießen wir in einem 

 weiten Reagenzglas einige Stückchen chlorsaures Kali mit so viel Salpeter- 

 säure, daß die Stücke von dieser vollständig bedeckt sind, legen dann die 

 zu untersuchenden, nicht zu dünnen Längsschnitte hinein und erwärmen 

 nun vorsichtig über einer Flamme, bis lebhafte Grasentwicklung eintritt. 

 Dann lassen wir das Reagens noch einige Min. einwirken und gießen 

 hierauf den- Inhalt des Reagenzglases in eine größere, mit Wasser gefüllte 

 Schale. Aus dieser werden die herumschwimmenden Schnitte mit dem 

 Glasstab in ein anderes Gefäß mit Wasser übertragen und hierauf in 

 einen Wassertropfen auf den Objektträger gebracht. Die Mazeration darf 

 übrigens nicht in demselben Raum vorgenommen werden, in dem die 

 Mikroskope stehen, da die sich entwickelnden Dämpfe diesen schaden 

 würden. Die auf dem Objektträger befindlichen Präparate werden mit 

 Nadeln zerkleinert und so in ihre einzefnen Elemente zerlegt. Hat das 

 Reagens richtig eingewirkt, so sind die Mittellamellen zwischen den Zellen 

 aufgelöst worden; die Trennung der Zellen ist daher leicht zu vollziehen, 

 weil nach dem Entfernen der Holzstoffe auch die pektinreichen Mittel- 

 lamellen in Lösung gingen, während die sekundären Verdickungsschichten 

 der Zellen zwar ihrer Holzstoffe, nicht aber ihrer Zellulose beraubt wurden. 

 Die Wände der isolierten Zellen werden somit von ihren sekundären Ver- 

 dickungsschichten gebildet. 



Man findet unter dem Mikroskop alle die Elemente isoliert wieder, 



die man zuvor im Verband studieren mußte. Sie sind in ihrer Struktur meist 



gut erhalten und lassen sich mit Chlorzinkjodlösung größtenteils violett 



färben. Da fallen uns zunächst die getüpfelten Gefäße auf, und zwar meist 



1) K. ZiJLSTRA, R3ca@il d. Trav. Ne^rland., Bd. V, 1908, S. 27 ff. 



