392 XIX. Chitinnachweis. Myzelnachweis in der Nährpflanze. 



kosin) bezeichnetes Produkt, das durch Jodlösungen, die nicht viel Jod 

 (0,5 — l°o) enthalten^; und denen eine Spur freie Säure, z. B. sehr verdünnte 

 Schwefelsäure, zugefügt wird, rotviolette Färbung annimmt. (Vgl. auch 

 Reg. IV Chitin.) Dieses vak WissELiNGHSche Verfahren läßt sich verein- 

 fachen, indem man die Untersuchungsobjekte, statt sie in ein Griasröhrchen 

 einzuschließen, in ein Becherglas mit konz. gesätt. Kalilauge bringt, die 

 durch Erhitzen über einer Bunsen-Flamme zum Sieden bei etwa 110" C ge- 

 kommen ist, und in ihr 20 bis längstens 30 Min. kocht, wobei man den 

 Becher mit einem Uhrglas zudeckt. Dann läßt sich an dem durch Aus- 

 Avaschen in Alk. abs. gehärteten Objekten in der eben angegebenen Weise 

 die Chitosan-Reaktion erzielen '). — Bei der Beurteilung der Membranen 

 endoparasitischer Pilze ist Vorsicht geboten, da an ihrem Aufbau auch, 

 wie das z. B. Johnson für Chrysoj^hlj^ctis endobiotica nachgewiesen hat, die 

 Membranen der an den Parasiten anstoßenden Zellen der Wirtspflanze be- 

 teiligt sein können ■'^), die dann Holz- bzw. Zellulosereaktionen geben *). So 

 wie die Zellulose in der Membran der höher organisierten Pflanzen'^), ist 

 das Chitin in solchen Pilzmembranen mit Kohlenhydraten verbunden, die 

 sich in Traubenzucker überführen lassen^). 



Die für die Membranen verschiedener Pilzgruppen angegebene Kailose 

 dürfte vielfach nichts anderes als Chitin darstellen''). Kalloseähnlich 

 reagierende Substanzen kommen jedenfalls in den Membranen der Perono- 

 spoi'een vor. Der Reichtum an solchen Stoffen läßt sich zum Nachweis 

 des Myzels dieser Pilze innerhalb ihrer Nährpflanzen verwerten^). 

 Man kann ganze Clewebeteile, Blatt-, Stengel-, Wurzelstücke oder auch 

 Schnitte verwenden. Handelt es sich um ganze Gewebestücke, so muß 

 man sie, falls sie nicht schon in Alkohol sich befanden, vielmehr frisch 

 oder trocken sind, kurze Zeit in Alkohol kochen, um alle Luft aus ihnen 

 zu vertreiben. Dann legt man sie in Salzsäure, die man höchstens mit 

 einem Drittel Wasser versetzt, und fügt je 1 g chlorsaures Kali auf 20 ccm 

 Flüssigkeit hinzu. In diesem Gremisch haben die Objekte einen halben 

 oder ganzen Tag im Winter, 5 — 6 Stunden im Sommer zu verweilen. Die 

 Gewebe müssen weiß geworden sein. Dann wäscht man sie gut aus und 

 bewahrt sie in Alkohol. Für die Beobachtung werden die Objekte nun- 

 mehr, wohl 1 Std. oder länger, mit einer konz. Lösung von Kali in Alkohol 

 behandelt. Unter Umständen empfiehlt es sich, eine Behandlung mit 

 Wasser, das mit einigen Tropfen Ammoniak versetzt ist, der Kalialkohol- 

 Behandlung vorausgehen zu lassen. Bei trockenen Objekten, die man dem 

 Herbar entnahm, wird man statt des geschilderten Verfahrens besser mit 

 reiner bzw. mit 1 oder 2 Volumen Wasser verd. Salpetersäure zum Er- 

 gebnis kommen. — Handelt es sich um Schnitte, so behandelt man diese 



1) Z. B. eine Lösung von 0,2 T. Jod luid 2 T. Jodkali auf 100 T. Wasser. 



2) Nach V. VouK, Ber. d. Deutsch, bot. Ges., Bd. XXXIII, 1915, S. 414. Auf diese 

 Weise konnte sowohl bei Phycomyceten, wie Ascomyceten und Basidiomyceten Chitin nach - 

 gewiesen werden. Über ein neueres vereinfachtes Verfahren vgl. Reg. IV Chitinnachweis. 



3) T. Johnson, Scient. Proceed. Roy. Dublin Soc, Bd. XII, Nr. 14, 1909, S. 133. 

 *) W. Bally, Jahrb. f. wiss. Bot., Bd. L, 1911, S. 122, H. VON Gtjttenbekg, Janrb. 



f. wiss. Bot., Bd. XLVJ, 1909, S. 466. 



*) Vgl. S. 171 dieses Praktikums. 



«) E. Winterstein, 1. c 1895, S. 69. 



7) Vgl. dazu Fr. Czapek, Biochemie der Pflanzen, 2. Aufl., Bd. I, 1913, S. 632 ff. 

 bzw. 3. Aufl., 1921 ebenda. Dort mid im Reg. IV bei Kallose (Fmigose) die hierhin- 

 gehörigen Literaturangaben von Mangin, Tanret, WiNTERSTElN, VAN WISSELINGH u. a. 



«) Nach L. Mangin. Bull. soc. d'hist. nat. d'Autim, T. VIII, 1895. 



