XIX. Myzelfärbung. Thallus-Bau von Flccliten: Anaptychia. 393 



mit reiner oder verd. Ja vellf. scher Lauge und nach dem Auswaschen mit 

 Kalialkohol. Man kann auch statt der Ja vellk sehen Lauge eine ^/gno" 

 oder Vsoo') J^ unter Umständen nur Y^of,„-proz. Lösung von übermangan- 

 saurem Kali anwenden. Die Färbungen werden vorgenommen mit Anilin- 

 blau und Orseilline BB oder Anilinblau und Vesuvin. Die mit Kalialkohol 

 behandelten Gewebe müssen in Essigsäure gelangen, die man mit einigen 

 Tropfen einer wässr. Lösung von Orseilline und 1 oder 2 Tropfen Anilin- 

 blau versetzte, um eine violette Lösung zu erhalten. Nach vollzogener 

 Färbung fügt man einen Tropfen Grlyzerin hinzu und entfernt nach und 

 nach mit Fließpapier den Überschuß der Farblösung. Das Myzel ist himmelblau, 

 während die Zellwände der Nährpflanze rosenrot gefärbt erscheinen. Will 

 man mit Benzidin-Farbstoffen färben, so muß das im alkalischen Medium 

 geschehen. Die besten Wirkungen erreicht man mit einem Gemisch von 

 Benzoazurin oder von Azurine brillante mit Rosaazurin. Das letztere färbt 

 die M3'zelfäden rosa oder rot, das erstere die Zellulosemembranen der 

 Nährpflanze blau. Die Objekte, die so gefärbt werden sollen, kommen in 

 eine wässr. Lösung des betreffenden Farbeugemisches, die man mit 20-proz. 

 kohlensaurem Natron versetzt. Die Einwirkung hat 2 — 3 Std. anzudauern: 

 die Objekte werden mit Wasser abgespült und in Wasser oder verd. 

 Glyzerin untersucht, die 1 — 2% Kupfersulfat enthalten. Das Kupfersulfat 

 fixiert die Farbstoffe und wird auch zu diesem Zweck in der Baum- 

 wollfärberei bei Anwendung von Benzidin-Farbstoffen benutzt. — Auch 

 kann man, wie z. B. bei Peronospora parasitica und Uredineen (vgl. auch 

 Reg. IV Uredineen) mit Vorteil folgendes Verfahren einschlagen^). Die 

 Schnitte werden zunächst in Delafields schem Hämatox3din (1 T. konz. 

 Lösung und 3 T. Aq. dest.) intensiv gefärbt, dann mit Wasser abgespült 

 und in Wasser getaucht, dem einige Tropfen Ammoniak zugesetzt worden 

 sind. Nach Entwässern in 95-proz. Alkohol kommen sie für 5 — 10 Min. 

 in eine i/2-proz. Lösung von Eosin in 95-proz. Alkohol. Nachdem die 

 Schnitte dann in Karbol-Terpentin (3 T. Terpentin und 3 T. Karbolsäure- 

 kristalle) aufgehellt, in Wasser abgespült und in Xylol überführt sind, 

 heben sich in ihnen die durch das Eosin gefärbten Myzelien deutlich von 

 den Zellwänden der Wirtspflanze ab. — Solche Färbungen gestatten es 

 leicht, auch die Haustorien der Parasiten zu verfolgen. So findet man 

 letztere auch bei Phj^tophthora infestans, wo sie in Gestalt sehr feiner 

 Fäden in die Zellen der Nährpflanze eindringen. Chlorzinkjod leistet beim 

 Studium des Myzels von Albugo Candida in Capsella Bursa pastoris gute 

 Dienste. Die Wände der Wirtszellen färben sich damit zunächst hellblau, 

 die Hyphen hingegen sofort dunkelblau, während die Haustorien eine 

 braune Färbung annehmen 2). 



Über den Ban des Lagers (Thalliis) der Flechten orientieren wir 

 uns am besten bei der an Baumstämmen all verbreiteten A n a p t y - 

 chia ciliaris. Statt frischem können wir auch Sammlungs- 

 material zur Untersuchung verwenden, das zum Schneiden entweder 

 in Wasser aufzuweichen oder trocken in Stearin einzubetten ist^). 

 Wir berücksichtigen jetzt nur den Bau des Thallus, nicht etwa die 

 auf ihm befindlichen, schüsseiförmigen Apothecien. Der Thallus ist 



1) E. J. Durand, Phytopath., Vol. I. 1911, S. 120. 



*) H. v. GUTTENBERQ, Beitr. z. physiol. Anat. d. Pilzgallen, 1905, S. 8. 

 ') Näh. 8. im Reg. IV Trockene Pflanzen. Die feineren Strukturverhältnisse lassen 

 sich, nur an entspr. fixiertem u. gefärbtem Material (s. Reg. IV Flechten) studieren. 



