398 XIX. Chlorophyllanreaktion. Fixierung und Färbung der Cladophora-Kerne. 



hervor. Auch stellen sich nach kurzer Zeit in den Chlorophyllplatten 

 unregelmäßig begrenzte, braune Körner aus Chlorophyllan 

 ein, die von zersetztem Chlorophyllfarbstoff herrühren und auch 

 nach Einwirkung anderer Säuren auftreten (Chlorophyllanreaktion) i). 



Um die Kerne genauer studieren zu können und vollen Einblick in 

 deren Verteilung zu gewinnen, wollen wir noch andere Mittel anwenden. 

 Diese Mittel sollen uns zugleich Gelegenheit bieten, einige bewährte Fixie- 

 rungs- und Färbungsmethoden kennenzulernen, denen die histologi- 

 schen Studien in den letzten Dezennien wesentliche Förderung verdanken. — 

 In Alk. abs. kollabieren die Cladophoren bandartig; sie lassen sich hin- 

 gegen gut mit bestimmten Säuren und Säuregemischen fixieren, die auch 

 für das Gewebe höher organisierter Pflanzen, wenn dieses entsprechend 

 zerkleinert in die Lösung eingetragen wird, sich besonders gut bewährt 

 haben. Wir legen von unserer Cladophora eine kleine Partie in 1-proz. 

 Chromsäure, eine andere kleine Partie in konz. Pikrinsäure, eine weitere 

 in Chrom -Essigsäure (Chromsäure O^T^/q, Essigsäure 0,5 o/^)^ eine weitere 

 in Chrom-Osmium-Essigsäure (Chromsäure 0,5 o/^, Osmiumsäure 0,2 "/q, Eis- 

 essig 0,2 o/q). Hierbei haben wir darauf zu achten, daß die Menge der 

 benutzten Flüssigkeit mindestens das Hundertfache des Volumens des zu 

 fixierenden Objekts betrage. Die Chromsäure und Chrom-Essigsäure lassen 

 wir einige Stunden, doch ohne Nachteil selbst 24 Std., die Chrom-Osmium- 

 Essigsäure ^/a Std., die Pikrinsäure etwa 24 Std. einwirken. In allen 

 Fällen müssen die Objekte hierauf auf das sorgfältigste in fiießendem 

 Wasser ausgewaschen werden (vgl. S. 62 ff. und 409). Ganz besonders hat 

 man darauf zu achten, daß alle Pikrinsäure aus den Objekten entfernt 

 werde, falls man diese mit Hämatein- Ammoniak (s. unten) färben will. — 

 Die verschiedenartig fixierten und gut ausgewaschenen Objekte legen wir 

 nunmehr in ein Uhrglas mit P. MAYEKSchem Karmalaun oder MAXEKSchem 

 Parakarmin 2). In den Karminen haben die Schnitte mehrere Stunden zu 

 verweilen. Eine andere Partie der Fäden färben wir mit P. MAYEBSchem 

 Hämalaun. Am besten ist es, von Zeit zu Zeit den Tinktionsgrad der Ob- 

 jekte an kleinen Proben unter dem Mikroskop zu kontrollieren und sie 

 herauszunehmen, wenn sie hinreichende Mengen Farbstoff aufgespeichert 

 haben. Sollte trotz dieser Vorsichtsmaßregel eine Überfärbung der Objekte 

 stattgefunden, d. h. diese zu dunkel sich gefärbt haben, so legt man sie in 

 reines Wasser oder in etwa 1-proz. wässr. Alaunlösung und läßt sie in den 

 betreffenden Flüssigkeiten so lange, bis die Intensität der Färbung in er- 

 wünschtem Maße abgenommen hat. Um die Pikrinpräparate nach der Hämatein- 

 Ammoniak-Methode^) zu färben, müssen wir aus ihnen, wie erwähnt, jede Spur 

 von Pikrinsäure entfernt haben. Wir übertragen sie in relativ große Mengen 

 ausgekochten Wassers, das wir noch wiederholt wechseln. In diesem zuvor 

 durch Kochen von Kohlensäure befreiten Wasser verweilen die Objekte an 

 24 Std., worauf sie erst gut gefärbt werden können. Zu dem Zweck werfen 

 wir einige Hämatoxylinkristalle in ein wenig Aq. dest. und blasen dieses 



1) R. WiLLSTÄTTER, Ami. d. Chemie, Bd. CCCLTV, 1907, S. 205; H. Malabski 

 und L. Maechlewski, Biochem. Zsitschr., Bd. XXVII, 1910, S. 246, auch H. MOLISCH, 

 Mikrochemie der Pflanzen, 2, Aufl., Jena, 3 921, S. 246. 



2) Die Eigenschaft des Zellkerns, bestimmte Farbstoffe mit Begierde aufzunehmen 

 und aufzuspeichern, wrirde von Th. Haetig entdeckt. Bot. Ztg., XII. Jahrg., 1854, 

 Sp. 877. In die tierische Histologie wurde das Verfahren von J. Geklach eingeführt, 

 Mikrosk. Studien a. d. Geb. d. menschl. Morphologie, 1858. 



3) Vgl. F. Schmitz, Sitzber. d. Niederrhein. GeseUsch., 13. Juli 1880. 



