XXI. Wiederfinden bestimmter Stellen im Präpanit. Bacillus subtilis: 469 

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umzogen bzw. diese dem Glasring aufgetragen, so daß die Ränder deB 

 Deckglases auf der Vaseline ruhen. Man drückt das Deckglas etwas an, 

 damit der Abschluß vollkommen sei. Ho ist der Tropfen entsprechend isoliert, 

 seine Verdunstung und etwaige Strömungen in seinem Innern, welche die 

 Bakterien in Bewegung versetzen könnten, zugleich ausgeschlossen. Wir 

 können \ins auch der einfachst möglichen, feuchten Kammer bedienen, näm- 

 lich eines mäßig dicken, kleinen Papprahmens, dessen inneres Lumen etwas 

 kleiner als der Durchmesser des zu benutzenden Deckglases ist, und dessen 

 äußerer Umriß nicht die Breite des Objektträgers übersteigt. Dieser Rahmen 

 wird in Wasser geworfen, wo er sich vollsaugt, und dann auf den Objektträger 

 gelegt. Ein Deckglas, das man in einer Flamme vorher sterilisiert, erhält 

 hierauf in der Mitte einen flach auszubreitenden Tropfen der Kulturflüssig- 

 keit, in die das zu untersuchende Objekt übertragen wird. Das Deckglas 

 dreht man mit rascher Wendung um und legt es, mit nach unten gekehrtem 

 Tropfen, auf den Papprahmen. Hält die Beobachtung länger an, so bringt 

 man von Zeit zu Zeit einige Tropfen Wasser auf den Papprahmen, damit 

 er nicht austrockne. Unterbricht man die Beobachtung, so kann man das 

 Präparat in einer größeren feuchten Kammer auf passendem Gestell, das 

 in einem mit Wasser halb angefüllten Teller aufgestellt wird, unter einer 

 mit ihren Rändern in das Wasser tauchenden Glasglocke vor Verdunstung 

 schützen. Es läßt sich eine bestimmte Stelle im Präparat später 

 wiederfinden, wenn wir, wie auf S. 129 angegeben, verfahren. Am 

 sichersten geht man jedoch, wenn man einen der S. 39 ff. angegebenen 

 „beweglichen Objekttische" oder „Kreuztische" benutzt, die eine langsame 

 Bewegung des Objekts in zwei sich kreuzenden Richtungen durch das 

 Gesichtsfeld des Mikroskops, eine genaue Durchmusterung des Präparats, 

 sowie auch die Notierung jeder Stellung und somit auch das Wiederfinden 

 jedes Punktes in diesem Präparat ermöglichen. — Sind die Nährstoffe des 

 Tropfens annähernd erschöpft, so steht die vegetative Zweiteilung still, und 

 es beginnt die endogene Sporenbildung. Nach Ablauf von 6 — 8 Std. sind 

 dann in den Fäden, in wenig gleichen Abständen, ellipsoidische, stark licht- 

 brechende Sporen vorhanden (Fig. 188 5). Die Fäden erscheinen im übrigen 

 entleert; nur farblose Hüllen verbinden die Sporen. An einzelnen Stellen 

 des Präparats findet man sicher die Sporen noch in Bildung. Sie zeigen 

 sich als stärker das Licht brechende Substauzansammlungen in dem Verlauf 

 jedes Stäbchens, und zwar meist gegen dessen Mitte. Die Ansammlung 

 wird immer stärker, während sich das Stäbchen entleert, und schließlich 

 ist die Spore vollendet. Läßt man die Kultur einige weitere Std. stehen, 

 so sind die Hüllen der Stäbchen undeutlich geworden, und nach Ablauf eines 

 Tages etwa erscheinen die Sporen frei, auf den Grund des Tropfens gesunken. 

 Mit Anilinwasser-Fuchsin und Methylenblau können wir hier, am besten 

 nach vorausgegangener Chromsäure-Beizung (s. S. 463), sehr schöne Doppel- 

 färbungen von Sporen und Stäbchen erzielen. — Unter ungünstigen Kultur- 

 Bedingungen, wie sie beispielsweise bei relativ zu hohem Zuckergehalt der 

 Lösungen sich einstellen, treten unregelmäßige Anschwellungen und sonst 

 abnorme Gestaltsveränderungen der Zellen, Involutionsfornien, auf. — Die 

 Sporen keimen sehr leicht, wenn sie in frische Nährstofflösung übertragen 

 werden: langsamer bei Zimmertemperatur, schneller bei 30°. Am besten 

 ist es, sie 5 Min. lang zu kochen und langsam abzukühlen. Dann kann 

 man schon nach 2 — 8 Std. die Anfänge der Keimung sehen ^ \. Die 

 M (). Brefeij), 1. c. 1881, S. 43. 



