478 XXI. Infektion des Nährbodens. Reagenzglaskulturen. 



man dann auf einer gut erstarrten Gelatineplatte in der Petei schale mit 

 einer in der Flamme stark, aber nicht bis zum Grlühen erhitzten und wieder 

 abgekühlten Zeichenfeder mehrere Reihen Punkte, die man nach ^/^ Min. 

 mit einem sterilen Deckglas bedeckt und unter Mikroskop mit starkem 

 Trockensystem untersucht. Es erscheinen da die Bakterien helleuchtend 

 zwischen den schwarzen Tuschepartikeln. Die Tuschepunkte, in denen nur 

 eine Bakterienzelle liegt, bezeichnet man auf der Unterseite der Schale, 

 läßt die Bakterien zu Kolonien auswachsen, hebt dann vorsichtig das 

 Deckglas ab und impft nun von dieser aus einer Zelle entstandenen 

 Kolonie ab. Will man die Kultur auf anderem Nährboden als Grelatine 

 durchführen, so bedeckt man die auf der Gelatineplatte gemachten Tusche- 

 punkte mit je einem sterilen Deckglassplitter, hebt die Splitter, unter 

 denen sich bei mikroskopischer Untersuchung nur ein Bakterium zeigt, 

 ab und überträgt sie auf oder in beliebige Nährböden, was leicht zu be- 

 werkstelligen ist, da beim Abheben von der Gelatineplatte Tusche und 

 Bakterien fest an dem Glasstückchen haften. 



Im übrigen nimmt man auch sonst vielfach die Infektion der Gelatine, 

 besonders von Agar-Agar, erst in der PETEischale vor. Man öffnet zu 

 diesem Zweck die Schale ein wenig an einer Seite und impft nun mit dem 

 Platindraht oder der Platinöse. W. Kruse empfiehlt dazu einen Platin- 

 pinsel und führt mit ihm, indem er über das Nähragar in der Schale 

 streicht, die Impfung eines Drittels ihrer Fläche aus. Dann wird der 

 Platinpinsel geglüht, über die zuvor infizierte Fläche gestrichen und mit 

 ihm das zweite Drittel der Fläche geimpft und von dieser endlich, in ganz 

 entsprechender Weise, das letzte Drittel. So wird eine ungleiche Ver- 

 teilung der Keime in den verschiedenen Teilen der Kulturschale er- 

 reicht. Mikroskope, die eine gleichmäßige Durchforschung einer PETEi- 

 schale gestatten sollen, müssen mit besonders großen Objekttischen aus- 

 gestattet sein. Da Nähragar erst bei Siedewärme des Wassers ganz flüssig 

 wird, so muß man es durch Eintauchen in warmes Wasser bis auf etwa 42 ** 

 abkühlen, bevor man es, ohne Gefahr für das Leben der zu untersuchenden 

 Keime, mit diesen infizieren kann. Dann gilt es aber, rasch die infizierte 

 Lösung in vorher leicht angewärmte Petei schalen zu gießen, nicht auf 

 Glasplatten, da das Agar schlecht am Glas haftet. Da aus dem Agar 

 beim Erstarren Wasser austritt, der Deckel auch sonst bei Temperatur- 

 veränderungen beschlägt, so ist es angezeigt, damit keine Schädigung der 

 Kultur durch Wasser erfolge, die Schalen bis zur mikroskopischen Unter- 

 suchung umgekehrt, mit dem Deckel nach unten zu halten. Um das Be- 

 schlagen der Agarkulturen überhaupt zu vermeiden, ist es gut, eine An- 

 zahl solcher umgekehrter Schalen auf eine mit trockenem Fließpapier be- 

 kleidete Glastafel zu stellen, ein Becherglas überzustülpen und sie so in 

 den Brütschrank zu bringen i). 



Die Kulturen auf Platten oder in PEXEischalen bilden den Ausgangs- 

 punkt für die Reagenzglaskulturen. Man entnimmt unter dem Mikroskop 

 mit der Spitze des ausgeglühten Platindrahtes einer ganz bestimmten Kolonie 

 der Platte eine Spur des zu übertragenden Materials. Das zu infizierende 

 Gelatineröhrchen hält man mit der Öffnung nach unten, entfernt mit 

 drehender Bewegung den Wattepfropf und führt nun von unten in die 

 Höhe, je nach der vorhandenen Absicht, entweder einen „Impfstich" oder 



1) Vgl. L. Heim, Lehrbuch der Bakteriologie, 5. Aufl., 1918, S. 130. 



